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多菌灵处理和光暗条件对朱顶红鳞片无介质培养的影响

2025-08-17 35 上传者：管理员

摘要：为促进朱顶红高效繁殖，研究了多菌灵消毒处理和光暗培养条件对朱顶红鳞片无介质培养繁殖的影响。结果表明，朱顶红无介质培养前，将种球进行消毒处理后鳞片的腐烂率明显低于未经消毒处理的腐烂率；种球消毒多菌灵的稀释倍数宜控制在800倍左右，种球消毒的时间宜控制在30～60 min；在朱顶红无介质培养中，暗培养有利于降低鳞片的腐烂率、促进子球的形成，而且形成的子球相对较大，也有利于鳞片根系发生。

关键词：
光暗条件
多菌灵处理
家庭园艺
无介质培养
朱顶红
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朱顶红(Hippeastrum)为石蒜科朱顶红属球根花卉,因其花色丰富､鲜艳,花形美观,随着家庭园艺的兴起,逐渐成为市民的新宠｡但种球国产化程度低,主要依赖进口,自育优质种球供应几乎为零,种球繁育已成为种球国产化的重要限制因素｡近年来针对朱顶红的繁殖研究主要集中在组织培养､鳞片扦插､种子繁殖等方面[1-3]｡朱顶红的种子繁殖一般用于新品种选育,组织培养的技术和成本相对较高,而朱顶红的鳞片扦插应用较为普遍,但多集中在土培繁殖[3-5]｡

何举忠等[6]认为百合无介质培养较基质培养有很多优点,如产率高､生长周期短､单位面积再生籽球数量多､适宜工厂化生产等｡目前朱顶红鳞片无介质培养未见相关报道,本研究应用多菌灵不同浓度､不同消毒时间对朱顶红种球进行消毒试验,并开展无介质光暗培养研究,通过鳞片腐烂率､生成子球数量､质量的评价,筛选种球消毒最佳处理和光暗最优培养条件,为朱顶红新品种工厂化､高效生产提供参考｡

1、材料与方法

1.1试验材料

试验材料选用种植于苏州农业职业技术学院国家球根花卉种质资源库的朱顶红‘阿拉斯加’,为白色重瓣花｡选用健康､无病虫害､球体饱满､直径6.5~7.0cm的种球｡装鳞片的容器为食品级长方体塑料盒｡催培设备为人工气候培养箱(型号为MGC-450BP-2L)｡

1.2试验方法

1.2.1消毒浓度处理｡试验种球消毒剂选用多菌灵,分别设置500､800､1000倍液对种球进行消毒处理30min,清水处理30min作对照(CK)｡所有处理经清水冲洗后,放入人工气候培养箱进行催培,温度25℃,光照强度21000Lux,光周期为14h光照､10h黑暗｡

1.2.2消毒时间处理｡采用多菌灵800倍液,对种球分别进行10､30､60min的消毒处理,清水处理30min作为对照(CK),所有处理经清水冲洗后,放入人工气候培养箱进行催培,温度25℃,光照强度21000Lux,光周期为14h光照､10h黑暗｡

1.2.3光暗处理｡光暗处理均用多菌灵800倍液消毒处理种球30min,培养箱温度均设置为25℃｡有光照处理设置光照强度为21000Lux,光周期为14h光照､10h黑暗;暗处理为24h全黑暗培养｡

1.3数据测定

所有处理的种球纵切8份后再切成双鳞片,去掉内部过嫩鳞片,放入不同塑料盒,盒内上下接触面各垫一张餐巾纸用于吸收水蒸气｡每处理重复3次,计算每个种球平均鳞片数｡鳞片催培开始后,每天对塑料盒进行换纸并观察鳞片腐烂情况,部分鳞片上长有少量霉菌可用刀片切除｡培养40d后,统计鳞片腐烂率､子球分化数､鳞片生根数及子球质量｡

鳞片腐烂率=腐烂鳞片数/处理鳞片总数×100%;繁殖系数=子球数/鳞片总数

子球质量评价:用游标卡尺测量所有子球横径,将子球平均直径(横径)按Ⅰ级:>7mm､Ⅱ级:3.6~6.9mm､Ⅲ级:0~3.5mm进行分级;并计算每个处理中各级子球的数量｡

2、结果与分析

2.1多菌灵处理对朱顶红鳞片无介质培养的影响

2.1.1消毒浓度对朱顶红鳞片无介质培养的影响｡由表1可知,不同多菌灵消毒浓度处理对朱顶红鳞片消毒效果不同｡清水浸泡(对照)鳞片的腐烂率最高,为91.67%,500倍多菌灵液消毒的鳞片腐烂率最低,为65.15%｡800倍多菌灵液和1000倍多菌灵液消毒种球的鳞片腐烂率与对照未达到显著性差异,但均比500倍多菌灵液消毒的鳞片腐烂率要高｡因此,总的趋势是多菌灵消毒浓度越高即稀释倍数越小,鳞片的腐烂率越低｡

子球的数量和质量是评判鳞片培养效果的重要因素,由表1可知,不同浓度多菌灵处理对子球形成的影响差异性较大｡清水､500倍､1000倍多菌灵液消毒种球后鳞片无介质培养均无小子球产生,仅有多菌灵800倍液处理有9个小子球产生,繁殖系数仅为0.13,而且产生的小子球相对较小,均为Ⅱ､Ⅲ级子球｡可能是清水和多菌灵1000倍液消毒种球相对鳞片污染率较高,影响子球的萌发,而多菌灵500倍液浓度偏高,影响子球的产生｡

表1消毒浓度对鳞片腐烂率､子球形成的影响

根系发育是衡量鳞片质量的一个重要因素,关系到催培结束后鳞片放入基质中能否更快地成活,鳞片从人工气候培养箱中移栽至育苗盘中,如果已有根系萌出,往往可以更快地吸收水分,从而可以大大提高子球的成活率｡在消毒浓度试验中,根的萌发表现出和子球萌发一样的规律,仅有多菌灵800倍液处理有4条根产生,其他处理均无根发生,原因可能和子球发生同理｡

2.1.2消毒时间对朱顶红鳞片无介质培养的影响｡由表2可知,随着消毒时间的延长,鳞片的腐烂率逐渐降低｡不经消毒的对照处理,鳞片的腐烂率最高,达91.67%,而消毒时间最长的60min,鳞片腐烂率最低,为39.66%,消毒10min和30min的处理,鳞片腐烂率居中｡

同时,从子球萌发数量和质量上看,不经消毒的对照处理和消毒10min的处理,均无子球萌发｡而从消毒30~60min可知,随着消毒时间的延长,子球的萌发数量增加,但产生的子球大小随消毒时间延长反而出现Ⅲ级小球数增加,总体子球变小｡可能是消毒时间太短,造成鳞片腐烂过高,影响子球萌出;而随着消毒时间的延长,鳞片腐烂率下降,子球萌发增多,但鳞片内的营养有限,所以子球变小｡

对于消毒时间试验根的数量,除经30min多菌灵消毒的处理有4条根萌出,其他处理均没有根萌发｡可能是不经消毒的清水处理和10min处理鳞片污染率过高,影响根的萌发｡消毒60min因处理时间偏长,影响根的产生｡

2.2光暗不同培养条件对朱顶红鳞片无介质培养的影响

由表3可知,光暗培养对鳞片的腐烂率､子球的形成和根数量的影响效果明显｡鳞片暗培养条件下,鳞片腐烂率低,仅为8.82%;子球萌发数量多而大,单个种球平均产生小子球达106个,Ⅰ级球数量有4个,Ⅱ级球有42个,鳞片繁殖系数高达1.56｡而光培养条件下,鳞片腐烂率偏高,达73.13%,子球总数也少,只有9个(Ⅱ级和Ⅲ级)｡对比光暗培养试验根的发生,暗培养条件下产生根的数量也相对较多,是光培养下的2倍｡对于光培养下鳞片高腐烂率,可能是光照容易引起密闭盒子内局部的温度升高,导致盒内水蒸气变多,高湿度引起高腐烂率｡对于子球和根的形成,暗培养下有更多更大的子球产生和根系发生,原理和植物组织培养暗培养相同,暗培养会积累更多的能量､有利于相关植物激素的合成､减少光抑制和光损伤等｡

表2消毒时间对鳞片腐烂率､子球形成的影响

表3光暗对鳞片腐烂率､子球形成的影响

3、结论与讨论

由本试验可知,在朱顶红鳞片进行试验前,对种球进行多菌灵消毒处理,不同处理的消毒效果不同｡种球进行了消毒处理后鳞片的腐烂率明显低于未经消毒处理的腐烂率;多菌灵浓度并非越高越好,种球消毒多菌灵的稀释倍数宜控制在800倍左右;种球消毒的时间宜控制在30~60min;在朱顶红无介质培养中,暗培养有利于降低鳞片的腐烂率､促进子球的形成,并且形成的子球相对较大,也有利于鳞片根系发生｡

在试验中,所有处理均出现不同程度的鳞片腐烂,鳞片腐烂率越高,繁殖系数越低,控制鳞片的腐烂率是提高鳞片繁殖率的核心所在｡本次试验只应用了多菌灵单种药剂,如何应用更高效的杀菌剂,或者复合应用多种杀菌剂进行种球消毒都值得进一步研究｡本试验开展了光暗培养对比试验,黑暗有利于提高鳞片的繁殖系数,这与曹彩霞等[7]在兰州百合鳞片气培效果结论基本一致,表明适度降低光照强度可提高鳞片的光合能力,从而更有利于鳞片的分化｡

参考文献:

[1]黄敏,梁春辉,许雯,等.朱顶红的组培快繁技术研究[J].湖南农业科学,2020(05):1-3.

[2]曹荣祥,高年春,张晓燕,等.进口朱顶红种子繁殖及栽培技术研究[J].江苏农业科学,2006(06):273-274.

[3]张克中,赵祥云,贾月慧.杂种朱顶红鳞片扦插繁殖技术研究[J].北京农学院学报,2001(04):37-41.

[4]吕文涛.朱顶红种球切割繁殖与培育技术研究[D].南京:南京农业大学,2013.

[5]田松青,朱旭东,成海钟,等.朱顶红不同繁殖方法比较研究[J].江苏农业科学,2008(05):153-156.

[6]何举忠,李云亚,徐学民.百合鳞瓣气培法工厂化生产籽球技术开发研究[J].甘肃农业科技,2002(02):29-30.

[7]曹彩霞,王娟,唐楠,等.兰州百合不同层次鳞片无介质催培效果的差异[J].江苏农业科学,2020,48(21):181-184.

基金资助:江苏省林业科技计划(编号:LYKJ[2020]27);江苏省特色花卉工程中心(苏发改高技发[2020]1460号);江苏省省级作物种质资源库(球宿根花卉)(编号:2024-SJ-017); 2023年江苏省职业院校学生创新创业培育计划项目;

文章来源:娄晓鸣,倪晶晶,童诗妤,等.多菌灵处理和光暗条件对朱顶红鳞片无介质培养的影响[J].现代园艺,2025,48(21):1-2+7.