摘要:目的初步探讨穿龙薯蓣皂苷元对DBA1/J小鼠CD4+CD25-T细胞的影响。方法采用MACS磁珠分选法分离DBA1/J小鼠脾CD4+CD25-T细胞,并鉴定纯度。穿龙薯蓣皂苷元作用CD4+CD25-T细胞后,采用ELISA方法检测各组培养上清中IL-10的浓度,Real-TimePCR方法检测Foxp3的水平,FCM检测Treg细胞的比率。结果免疫磁珠术分选DBA1/J小鼠脾CD4+CD25-T细胞纯度达93.89%。给药作用48h后,与对照组相比,穿龙薯蓣皂苷元组上清中IL-10的浓度显著升高(P<0.05),Foxp3mRNA水平明显上升(P<0.05),Treg细胞比率明显升高(P<0.05)。结论穿龙薯蓣皂苷元能明显提升DBA1/J小鼠脾脏CD4+CD25-T细胞上清中细胞因子IL-10浓度,Treg细胞Foxp3mRNA水平及Treg细胞比率。
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调节性T细胞(Treg)是一类具有负向免疫调节功能的CD4+T细胞亚群,对多种自身免疫性疾病有抑制作用[1]。Treg细胞的分子标志通常为CD25,并且特异性表达Foxp3,Treg细胞可以通过分泌IL-10等抑制性细胞因子发挥负向免疫调节作用[2],CD4+CD25-T细胞则作为效应细胞参与免疫应答。近年来许多研究发现系统性红斑狼疮(SLE)、类风湿关节炎(RA)等多种自身免疫疾病中Treg细胞比例显著降低[3]。实验结果证实,在体外可用CD4+CD25-T细胞为前体细胞,通过诱导干预,使CD4+CD25-T细胞转化为Treg细胞[4]。
本课题组前期实验结果显示穿龙薯蓣皂苷元可调节CD4+T细胞亚群、减少炎性因子的产生,对类风湿关节炎有一定治疗作用[5],但具体作用机制仍在进一步研究。本实验以雌激素作为阳性对照药物[6],通过研究穿龙薯蓣皂苷元对CD4+CD25-T细胞上清中细胞因子IL-10浓度、Treg细胞Foxp3mRNA水平及Treg细胞比率影响,旨在初步研究穿龙薯蓣皂苷元对CD4+CD25-T细胞转化为CD4+CD25+Treg细胞的诱导作用,为穿山龙治疗RA的开发应用提供实验依据。
1、材料与方法
1.1 实验动物
雄性DBA1/J小鼠,SPF级,30只,7~8周龄,购自上海斯莱克实验动物有限责任公司,许可证号码:SCXK(沪)2012-0002。
1.2 主要试剂
TheCD4+CD25+RegulatoryTCellIsolationKitmouse,德国MiltenyiBiotec公司;CD3单抗、CD28单抗,Biolegend公司;mouserIL-2,Peprotech公司;雌二醇,Solarbio公司;MouseIL-10ELISAKit,美国Biolegend公司;MouseRegulatoryTCellStainingKit#3,美国Ebioscience公司;SYBRPremixExTaqTMII试剂盒、Foxp3引物、GAPDH引物,中国大连宝生物工程有限公司。
1.3 方法
1.3.1 制备小鼠脾细胞悬液
在超净工作台中摘取DBA1/J小鼠脾脏,置于装有培养液的玻璃培养皿中。小鼠脾脏被400目尼龙滤网包裹,用研磨棒轻轻研磨脾组织。吸取脾组织滤液,将滤液再次过400目滤网,并收集组织滤液。用红细胞裂解液裂解脾脏中红细胞后,300g离心10min,再用PBS洗涤脾淋巴细胞2次。
1.3.2 CD4+CD25-T细胞的分选
采用免疫磁珠细胞分离术(MACS),将上述裂红后的脾淋巴细胞悬液,严格按照分离柱试剂盒说明书分选小鼠脾脏CD4+CD25-T细胞,得到CD4+CD25-T细胞。
1.3.3 CD4+CD25-T细胞的活性和纯度检测
CD4+CD25-T细胞常规台盼兰染色判定细胞活性。采用流式细胞术(FCM)检测分离获得的CD4+CD25-T的纯度。
1.3.4 CD4+CD25-T细胞体外培养及分组
96孔板中各孔加200μlCD4+CD25-T细胞(2×105个),各孔中再加入5μg/mLCD3抗体、1μg/mLCD28抗体、1000U/mLrIL-2。将CD4+CD25-T细胞分为空白对照组;穿龙薯蓣皂苷元高、中、低组;阳性对照组五组。阳性对照组加入25ng/mL雌二醇。共培养48h后,收取细胞检测。
1.3.5 ELISA法检测IL-10的水平
按上述方法实验分组,细胞培养48h后,用ELISA法检测各组培养上清中IL-10的浓度。
1.3.6 Real-TimePCR方法检测Foxp3的表达
按上述方法实验分组,细胞培养48h后,收集各组细胞用实时荧光定量PCR方法检测Foxp3的表达。Foxp3引物序列:上游引物5’-AGTGCCTGTGTCCTCAATGGTC-3’,下游引物5’-AGGGCCAGCATAGGTGCAAG-3’;GAPDH引物序列:上游引物5’-AGGTCGGTGTGAACGGATTTG-3’,下游引物5’-TGTAGACCATGTAGTTGAGGTCA-3’。
1.3.7 FCM检测Treg细胞比例
按上述方法实验分组,细胞培养48h后,用FCM检测Treg细胞比率。
1.4 统计学分析处理
实验结果以表示,采用SPSS22.0统计学软件对实验数据进行分析。组间比较采用单因素方差分析,两两比较采用t检验,P<0.05表示差异有统计学意义。
2、结果
2.1 CD4+CD25-T细胞活性及纯度检测
免疫磁珠术分选出的CD4+CD25-T经盼兰染色,CD4+CD25-T细胞活性达90%以上。FCM检测得CD4+CD25-T细胞纯度为93.89±0.16,细胞纯度达到90%以上,见图1。
2.2 ELISA法测IL-10水平结果
药物作用CD4+CD25-T细胞48h后,与对照组相比,穿龙薯蓣皂苷元组培养上清中IL-10浓度显著升高(P<0.05),见图2。
2.3 Real-TimePCR方法检测Foxp3结果
药物作用CD4+CD25-T细胞48h后,与对照组相比,穿龙薯蓣皂苷元组Foxp3mRNA表达水平明显上升(P<0.05),见图3。
2.4 各组Treg细胞比率结果
药物作用CD4+CD25-T细胞48h后,与对照组相比,穿龙薯蓣皂苷元组Treg细胞比率明显上升(P<0.05),见图4,图5。
3、讨论
CD4+T细胞是参与机体适应性免疫应答的重要细胞,其中Treg细胞是一类重要的负向免疫调节细胞,其表面高表达CD25分子,并且Foxp3是CD4+CD25+Treg细胞特异性转录因子,由此与作为免疫应答效应细胞的CD4+CD25-T区别开来。抗炎因子IL-10通过活化的巨噬细胞来抑制炎症因子如TNF-α、IL-6、IL-1的表达,并限制由炎症引起的组织破坏,Treg细胞则可通过产生IL-10、TGF-β等细胞因子来控制自身反应性[7]。
近年多项研究证实,RA等多种自身免疫病患者体内,Treg数量显著低于正常水平[8]。有研究显示,在体外可用CD4+CD25-T细胞为前体细胞,通过诱导干预,使CD4+CD25-T细胞转化为Treg细胞[10]。因此通过诱导干预,使CD4+CD25-T细胞转化为在体内含量很低的Treg细胞已成为治疗自身免疫病的新靶点。
穿山龙为薯蓣科植物穿龙薯蓣的根茎,祖国医学认为,其具有舒筋活血、祛风除湿的作用。穿山龙主要药用成分为穿龙薯蓣皂苷,由于在机体内代谢后皂苷最终转化为皂苷元被机体吸收,并发挥治疗的作用,所以本实验采用薯蓣皂苷元作为实验药物。薯蓣皂苷元具有雌激素样作用[11],而雌激素又能诱导CD4+CD25-T细胞转化为CD4+CD25+Treg细胞[6],故选用雌激素作为阳性对照药物。
为更加明确穿龙薯蓣皂苷元的作用,本实验采用MACS法分选出高纯度的CD4+CD25-T细胞,对其直接进行药物作用。结果显示,穿龙薯蓣皂苷元能明显升高CD4+CD25-T细胞上清中免疫抑制性细胞因子IL-10的水平,提高Treg细胞Foxp3mRNA的水平及Treg细胞比率,证明穿龙薯蓣皂苷元能诱导DBA1/J小鼠脾脏CD4+CD25-T细胞向Treg细胞转化,为穿山龙治疗RA作用机制的研究及穿山龙的开发应用提供实验依据。
参考文献:
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文章来源:梁秀军,董永彩,李强,陈萌,田焕娜,赵晓菲.穿龙薯蓣皂苷元对DBA1/J小鼠CD4~+CD25~-T细胞的影响[J].承德医学院学报,2021,38(06):463-466.
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2025-08-05导尿管相关尿路感染(catheter-associatedurinarytractinfection,CAUTI)在老年住院患者中发病率高、复发频繁,是临床亟待解决的难题[1-2]。当前抗生素治疗虽能控制病原体增殖,但面临两大局限:一是耐药性问题日益突出,二是难以促进受损尿道黏膜的功能修复[3]。
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