摘要:目的研究龙胆苦苷对脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)诱导血管内皮细胞损伤的作用及机制。方法以LPS刺激大鼠主动脉血管内皮细胞RAEC,并给予低、中、高剂量(5、10、20μmol/L)龙胆苦苷进行干预,采用CCK-8法检测细胞增殖情况;采用流式细胞术检测细胞凋亡情况;采用试剂盒检测细胞丙二醛水平和超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)活性;采用qRT-PCR法检测细胞中肿瘤坏死因子-α(tumornecrosisfactor-α,TNF-α)、白细胞介素-6(interleukin-6,IL-6)、IL-1βmRNA表达情况;采用Westernblotting方法检测细胞中磷酸化p65(p-p65)和剪切型半胱氨酸蛋白酶-3(cleavedCaspase-3)蛋白表达情况。RAEC细胞给予核因子-κB(nuclearfactor-κB,NF-κB)信号激活剂处理,考察NF-κB信号激活剂对龙胆苦苷改善RAEC细胞损伤的影响。结果与对照组比较,模型组细胞活性显著降低(P<0.05),细胞凋亡率显著升高(P<0.05),丙二醛水平显著升高(P<0.05),SOD活性显著降低(P<0.05),TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平显著升高(P<0.05),cleavedCaspase-3和p-p65蛋白表达水平显著升高(P<0.05)。与模型组比较,龙胆苦苷组细胞活性显著升高(P<0.05),细胞凋亡率显著降低(P<0.05),丙二醛水平显著降低(P<0.05),SOD活性显著升高(P<0.05),TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平显著降低(P<0.05),cleavedCaspase-3和p-p65蛋白表达水平显著降低(P<0.05)。NF-κB信号激活剂显著抑制龙胆苦苷改善RAEC细胞损伤的作用(P<0.05)。结论龙胆苦苷能够抑制LPS诱导的RAEC细胞凋亡、氧化损伤和炎性因子表达,其作用机制可能与抑制NF-κB信号通路有关。
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血管内皮细胞具有分泌细胞因子、维持血管结构等多种功能,在肿瘤、严重感染、心血管系统疾病发生过程中均发现有血管内皮细胞损伤[1]。病理条件下,细胞分泌大量的炎性因子,合成活性氧自由基,细胞过度凋亡[2]。脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)促进血管内皮细胞凋亡、氧化应激和炎性因子分泌[3]。龙胆苦苷提取自龙胆科植物,具有抗氧化、抗炎、杀菌等作用,临床上主要用于抗炎、健胃、保肝以及抗病原微生物的治疗[4]。研究发现,龙胆苦苷能够改善氧化应激下血管内皮细胞氧化损伤,龙胆苦苷可能具有血管内皮损伤保护作用[5]。龙胆苦苷能够通过抑制核因子-κB(nuclearfactor-κB,NF-κB)信号通路,从而抑制氧化应激和炎性反应[6]。人体内脑、肝、心、肺等多种组织均表达NF-κB,NF-κB负责调控氧化应激、细胞凋亡和炎性反应[7]。LPS可激活血管内皮细胞NF-κB信号通路,抑制NF-κB信号通路能够保护血管内皮细胞损伤[8]。本研究考察龙胆苦苷对LPS诱导的血管内皮细胞损伤的作用及机制,为其治疗感染等因素诱导的血管内皮损伤提供依据。
1、材料
1.1细胞
大鼠主动脉血管内皮细胞RAEC购自上海中乔新舟生物科技有限公司。
1.2药品与试剂
龙胆苦苷(批号L-005,质量分数>98%)购自成都瑞芬思生物科技有限公司;丙二醛检测试剂盒(批号BC0025)、超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)检测试剂盒(批号BC0175)、膜联蛋白V(AnnexinV)-异硫氰酸荧光素(fluoresceinisothiocyanateisomer,FITC)/碘化丙锭(propidiumiodide,PI)细胞凋亡检测试剂盒(批号CA1020)购自北京索莱宝科技有限公司;兔抗磷酸化p65(p-p65)抗体、兔抗剪切型半胱氨酸蛋白酶-3(cleavedCaspase-3)抗体、兔抗甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphatedehydrogenase,GAPDH)抗体、HRP标记的山羊抗兔抗体购自英国Abcam公司;RPMI1640培养基(批号R8758)、胎牛血清(批号F2442)购自美国Sigma公司;PMA(批号GT6290)购自北京华越洋生物科技有限公司;引物由武汉金开瑞生物工程有限公司合成。
1.3仪器
MultiscanMK3酶标仪(美国ThermoFisherScientific公司);FC500流式细胞仪(美国Beckman公司);5424离心机、5810R离心机(德国Eppendrof公司);LightCycler480荧光定量PCR仪(美国Roche公司);PowerPac蛋白电泳仪、GelDocXR+凝胶显示系统(美国Bio-Rad公司)。
2、方法
2.1细胞培养
RAEC细胞用含10%胎牛血清的RPMI1640培养基,于37℃、5%CO2培养箱中培养。
2.2龙胆苦苷对RAEC细胞活力的影响
取处于对数生长期的RAEC细胞,以3×103/孔接种至96孔板中,培养12h。设置对照组和龙胆苦苷(5、10、20、40、80μmol/L)组,各给药组加入相应药物,对照组加入不含药物的培养基,培养24h。每孔加入10μLCCK-8工作液,孵育2h,采用酶标仪检测490nm处的吸光度(A)值。
2.3龙胆苦苷对RAEC细胞增殖的影响
取处于对数生长期的RAEC细胞,以3×103/孔接种至96孔板中,培养12h。设置对照组、模型组和龙胆苦苷(5、10、20μmol/L)组,模型组和各给药组加入LPS(100μg/mL),各给药组再加入相应药物,对照组加入不含药物的培养基,培养24h。按“2.2”项下方法检测各组细胞活力。
2.4龙胆苦苷对RAEC细胞凋亡的影响
取处于对数生长期的RAEC细胞,以1×103/孔接种至6孔板中,培养12h。设置对照组、模型组和龙胆苦苷(5、10、20μmol/L)组,模型组和各给药组加入LPS(100μg/mL),各给药组再加入相应药物,对照组加入不含药物的培养基,培养24h。收集细胞,以PBS溶液重悬,制成5×105/mL细胞悬液,加入5μLAnnexinV-FITC和5μLPI染色液,1h内采用流式细胞仪测定各组细胞凋亡情况。
2.5龙胆苦苷对RAEC细胞丙二醛水平和SOD活性的影响
按“2.4”项下方法处理细胞,按照试剂盒说明书检测各组细胞丙二醛水平和SOD活性。
2.6龙胆苦苷对RAEC细胞肿瘤坏死因子-α(tumornecrosisfactor-α,TNF-α)、白细胞介素-6(interleukin-6,IL-6)和IL-1βmRNA表达的影响
按“2.4”项下方法处理细胞,按照试剂盒说明书提取细胞总RNA并合成cDNA,进行qRT-PCR分析。引物序列:TNF-α上游引物5’-TGACAAGCC-TGTAGCCCATGTT-3’,下游引物5’-AGGGCAATG-ATCCCAAAGTAGA-3’;IL-6上游引物5’-CCAGTA-CCCCCAGGAGAAGAT-3’,下游引物5’-TTGCCTT-TTTCTGCAGGAAC-3’;IL-1β上游引物5’-AGTT-GCCTTCTTGGGACTGA-3’,下游引物5’-TCCAC-GATTTCCCAGAGAAC-3’;GAPDH上游引物5’-CCAGCAAAGAGACCAAGAGGAA-3’,下游引物5’-ATGGTACATAGACAAGGTGCGG-3’。
2.7龙胆苦苷对RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达的影响
按“2.4”项下方法处理细胞,收集细胞,加入RIPA裂解液,4℃、12000×g离心10min,收集上清液,采用BCA蛋白定量试剂盒测定蛋白质量浓度。蛋白样品经10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,转至PVDF膜,于5%牛血清白蛋白中封闭1h,分别加入p-p65和cleavedCaspase-3抗体(1∶600),4℃孵育过夜;加入HRP标记的山羊抗兔抗体(1∶4000),室温孵育2h,加入ECL发光液显影。
2.8NF-κB信号激活剂(PMA)对龙胆苦苷促进RAEC细胞增殖的影响
取处于对数生长期的RAEC细胞,以3×103/孔接种至96孔板中,培养12h。设置对照组、模型组、龙胆苦苷(10μmol/L)组和龙胆苦苷(10μmol/L)联合PMA(1μmol/L)组,模型组和各给药组加入LPS(100μg/mL),各给药组再加入相应药物,对照组加入不含药物的培养基,培养24h。按“2.2”项下方法检测各组细胞活力。
2.9PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞凋亡的影响
取处于对数生长期的RAEC细胞,以1×103/孔接种至6孔板中,培养12h。设置对照组、模型组、龙胆苦苷(10μmol/L)组和龙胆苦苷(10μmol/L)联合PMA(1μmol/L)组,模型组和各给药组加入LPS(100μg/mL),各给药组再加入相应药物,对照组加入不含药物的培养基,培养24h。按“2.4”项下方法检测各组细胞凋亡情况。
2.10PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞丙二醛水平、升高SOD活性的影响
按“2.8”项下方法处理细胞,按“2.5”项下方法检测各组细胞丙二醛水平和SOD活性。
2.11PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平的影响
按“2.8”项下方法处理细胞,按“2.6”项下方法检测各组细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达情况。
2.12PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达水平的影响
按“2.8”项下方法处理细胞,按“2.7”项下方法检测各组细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达情况。
2.13统计学分析
采用SPSS21.0软件分析数据,计量资料以s表示,用独立样本t检验和单因素方差比较。
3、结果
3.1龙胆苦苷对RAEC细胞活力的影响
如表1所示,与对照组比较,龙胆苦苷(5、10、20μmol/L)组细胞活力无明显变化,龙胆苦苷(40、80μmol/L)组细胞活力显著降低(P<0.05)。因此,选择5、10、20μmol/L龙胆苦苷进行后续研究。
3.2龙胆苦苷对RAEC细胞增殖和凋亡的影响
如图1和表2所示,与对照组比较,模型组细胞活力显著降低(P<0.05),细胞凋亡率显著升高(P<0.05);与模型组比较,龙胆苦苷组细胞活力显著升高(P<0.05),细胞凋亡率显著降低(P<0.05),呈剂量相关性,表明龙胆苦苷可促进LPS诱导的RAEC细胞增殖并抑制其凋亡。
表1龙胆苦苷对RAEC细胞活力的影响
图1龙胆苦苷对RAEC细胞凋亡的影响
表2龙胆苦苷对RAEC细胞增殖和凋亡的影响
3.3龙胆苦苷对RAEC细胞丙二醛水平和SOD活性的影响
如表3所示,与对照组比较,模型组细胞丙二醛水平显著升高(P<0.05),SOD活性显著降低(P<0.05);与模型组比较,龙胆苦苷组细胞丙二醛水平显著降低(P<0.05),SOD活性显著升高(P<0.05),呈剂量相关性,表明龙胆苦苷可抑制LPS诱导的RAEC细胞氧化应激。
表3龙胆苦苷对RAEC细胞丙二醛水平和SOD活性的影响
3.4龙胆苦苷对RAEC细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达的影响
如表4所示,与对照组比较,模型组细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平显著升高(P<0.05);与模型组比较,龙胆苦苷组细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平显著降低(P<0.05),呈剂量相关性,表明龙胆苦苷可抑制LPS诱导的RAEC细胞炎性因子的表达。
表4龙胆苦苷对RAEC细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达的影响
3.5龙胆苦苷对RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达的影响
如图2和表5所示,与对照组比较,模型组细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达水平显著升高(P<0.05);与模型组比较,龙胆苦苷组细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达水平显著降低(P<0.05),呈剂量相关性,表明龙胆苦苷可抑制LPS诱导的RAEC细胞NF-κB信号通路的激活,并抑制细胞凋亡。
图2龙胆苦苷对RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达的影响
表5龙胆苦苷对RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达的影响
3.6PMA对龙胆苦苷促进RAEC细胞增殖以及抑制RAEC细胞凋亡的影响
如图3和表6所示,与龙胆苦苷组比较,龙胆苦苷联合PMA组细胞活力显著降低(P<0.05),细胞凋亡率显著升高(P<0.05)。
3.7PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞丙二醛水平、升高SOD活性的影响
如表7所示,与龙胆苦苷组比较,龙胆苦苷联合PMA组细胞丙二醛水平显著升高(P<0.05),SOD活性显著降低(P<0.05)。
图3PMA对龙胆苦苷抑制血管内皮细胞凋亡的影响
表6PMA对龙胆苦苷促进血管内皮细胞增殖以及抑制细胞凋亡的影响
表7PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞丙二醛水平、升高SOD活性的影响
3.8PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平的影响
如表8所示,与龙胆苦苷组比较,龙胆苦苷联合PMA组细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平显著升高(P<0.05)。
3.9PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达水平的影响
如图4和表9所示,与龙胆苦苷组比较,龙胆苦苷联合PMA组细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达水平显著升高(P<0.05)。以上结果表明,PMA能够抑制龙胆苦苷改善RAEC细胞损伤的作用。
表8PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平的影响
图4PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达的影响
表9PMA对龙胆苦苷抑制RAEC细胞p-p65和cleavedCaspase-3蛋白表达的影响
4、讨论
龙胆苦苷为裂环环烯醚萜化合物,能够抑制氧化应激和炎性反应[4]。龙胆苦苷能够抑制氧化应激诱导的血管内皮细胞损伤和细胞凋亡[5]。本研究结果显示,与模型组比较,龙胆苦苷组细胞活力升高,细胞凋亡率降低,提示龙胆苦苷可能具有改善LPS诱导的血管内皮细胞损伤的作用。
LPS刺激血管内皮细胞损伤与氧化应激、炎性反应有关[9]。LPS诱导的血管内皮细胞中抗氧化酶的活性下降,抗氧化酶活性降低能够直接诱导氧自由基的大量聚集,过量的氧自由基能够刺激细胞,诱导脂质发生过氧化,导致氧化损伤;还能够激活细胞内的凋亡反应,促进细胞凋亡[10,11]。丙二醛水平可直接反应细胞氧化损伤程度[12]。SOD是氧自由基清除剂,也是主要的抗氧化酶之一[13]。Caspase蛋白家族被激活后形成凋亡级联反应,诱导细胞凋亡;Caspase-3是Caspase凋亡级联反应的下游执行因子,其被活化后是细胞凋亡的标志[14,15]。LPS诱导血管内皮细胞分泌炎性因子,促进炎性反应的产生并诱导细胞凋亡[16]。血管内皮细胞分泌TNF-α、IL-6、IL-1β等炎性因子,诱导炎性损伤[17,18,19]。氧自由基过度积累可诱导炎性反应,并且炎性因子也可促进氧化应激[20,21]。本研究结果显示,模型组细胞丙二醛水平升高,SOD活性降低,cleavedCaspase-3蛋白表达水平降低,TNF-α、IL-6和IL-1βmRNA表达水平升高;龙胆苦苷能够显著抑制LPS诱导的血管内皮细胞炎性因子表达和氧化损伤,抑制细胞凋亡。
龙胆苦苷能够通过抑制NF-κB信号通路的激活发挥抗损伤作用[6]。本研究结果显示,龙胆苦苷组细胞p-p65蛋白表达水平降低。p65是NF-κB信号通路的关键亚单位,其表达量与NF-κB信号通路的激活水平有关[22]。NF-κB在炎性反应、细胞生长和氧化应激等过程中均有调控作用[23]。血管内皮损伤中NF-κB信号异常激活,抑制NF-κB信号通路能够缓解LPS诱导的血管内皮细胞损伤[7]。本研究结果显示,PMA能够抑制龙胆苦苷改善RAEC细胞损伤的作用,表明龙胆苦苷能够通过NF-κB信号通路发挥血管内皮细胞损伤保护作用。
综上,龙胆苦苷能够改善LPS诱导的血管内皮细胞损伤,其机制与抑制NF-κB信号通路有关。
利益冲突所有作者均声明不存在利益冲突
参考文献:
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文章来源:胡志良,池豪,丁水印.龙胆苦苷对脂多糖诱导血管内皮细胞损伤的作用及机制[J].中草药,2021,52(10):3002-3008.
基金:河南省科学技术计划项目(2018225019)
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