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莪连颗粒调控JAK2/STAT3通路治疗慢性萎缩性胃炎的机制

  2025-01-13    213  上传者:管理员

摘要:目的 通过转录组测序探讨莪连颗粒对慢性萎缩性胃炎(CAG)大鼠Janus激酶2(JAK2)/信号转导和转录激活因子3(STAT3)通路的影响,揭示莪连颗粒治疗CAG的机制。方法 18只6周龄雄性SD大鼠适应性喂养1周后,随机分为正常组、模型组和莪连颗粒组。除正常组外,模型组、莪连颗粒组采用N-甲基-N'-硝基-N-亚硝基胍(MNNG)综合法构建CAG大鼠模型,莪连颗粒组予莪连颗粒水溶液灌胃(剂量3.24 g/kg),干预周期均为40周。苏木精-伊红(HE)染色法观察大鼠胃窦组织病理;转录组学法进行建库测序及生物信息学分析;蛋白免疫印迹(Western blot)法检测各组大鼠胃窦组织JAK2、磷酸化Janus激酶2(p-JAK2)、STAT3、磷酸化信号转导和转录激活因子3(p-STAT3)、细胞因子信号抑制因子3(SOCS3)、B淋巴细胞瘤-2基因蛋白(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)的表达。结果 正常组大鼠胃黏膜上皮结构完整,腺体形态规则,排列整齐规律;模型组大鼠胃黏膜腺体萎缩,排列紊乱;莪连颗粒组大鼠胃黏膜腺体形态尚完整,排列尚规律。与正常组比较,模型组差异基因3 595个,其中上调1 203个,下调2 392个;与模型组比较,莪连颗粒组差异基因561个,其中上调174个,下调387个。京都基因和基因组百科全书数据库(KEGG)富集分析结果显示,莪连颗粒干预CAG作用机制可能与趋化因子信号传导途径、磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)-蛋白激酶B(Akt)信号通路、癌症通路等密切相关。Western blot提示,与正常组比较,模型组大鼠胃窦组织p-JAK2、p-STAT3、Bcl-2蛋白表达显著升高(P<0.01,P<0.001),SOCS3、Bax蛋白表达显著降低(P<0.01);与模型组比较,莪连颗粒组大鼠胃窦组织p-JAK2、p-STAT3、Bcl-2蛋白表达显著降低(P<0.01,P<0.001),SOCS3、Bax蛋白表达显著升高(P<0.05)。结论 本研究通过MNNG综合法成功复制CAG大鼠模型,借助转录组测序发现并经验证表明莪连颗粒可能通过抑制JAK2/STAT3通路治疗CAG。

  • 关键词:
  • CAG
  • 中药研究
  • 大鼠模型
  • 慢性萎缩性胃炎
  • 莪连颗粒
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慢性萎缩性胃炎(chronic atrophic gastritis,CAG)是一种临床常见的难治性疾病。“慢性浅表性胃炎→CAG→肠化→不典型增生→胃癌(gastric cancer,GC)”被认为是胃癌的经典演化模式,CAG伴肠化和异型增生者,GC发病率高达6%。CAG为胃“炎癌转化”的关键环节,有效防治CAG对于降低GC的发生率和病死率具有重要意义[1-2]。目前,西医治疗CAG短期效果明显,但临床症状容易反复[3]。中医药治疗CAG有较好临床疗效。

慢性萎缩性胃炎可归属于中医“胃脘痛”“胃痞”范畴。首届全国名中医蔡淦教授认为此病具有本虚标实、虚实夹杂的特点,病变以脾胃虚弱为本,痰湿热毒、气滞血瘀为标,故在此基础上,创制了莪连颗粒,功在健脾益气、活血化瘀、清热解毒、祛湿化痰。该方在临床应用已30多年,取得了良好的疗效[4-5]。早期动物实验研究[6-8]显示,莪连颗粒能够逆转N-甲基-N'-硝基-N-亚硝基胍(MNNG)造模大鼠胃黏膜上皮细胞的异型性。网络药理学研究[9]揭示莪连颗粒可能通过调控丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)信号通路等干预萎缩性胃炎癌前病变(PLGC)。

转录组学技术有助于研究基因组结构和功能,在建立应对疾病的分子生物标志物、药物作用靶点方面发挥着重要作用[10-11]。Janus激酶2/信号转导和转录激活因子3(JAK2/STAT3)信号通路在CAG等消化系统疾病中发挥着重要作用[12-14]。JAK2对STAT3表达发挥正反馈调节作用[15]。STAT3是多条信号通路的交汇点,在多种恶性肿瘤的组织、细胞中存在着过度表达[16]。研究[17]发现,浅表性胃炎、CAG伴肠化、不典型增生和GC中磷酸化信号转导和转录激活因子3(p-STAT3)的阳性表达率呈逐步升高趋势。当JAK2/STAT3被过度激活时,其负反馈调节器细胞因子信号抑制因子3(SOCS3)表达增加[18]。B淋巴细胞瘤-2基因蛋白(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)在CAG等消化道疾病发生、发展中扮演了重要角色[19-22]。Bcl-2可与其他促凋亡蛋白形成异质二聚体,抑制细胞凋亡;Bax可以提高细胞凋亡的敏感性,促进细胞凋亡。JAK2/STAT3信号通路激活后,p-STAT3可调控Bcl-2、Bax蛋白表达从而抑制细胞凋亡[23-24]。

本研究通过MNNG综合法构建CAG大鼠模型,苏木精-伊红(HE)染色观察胃窦组织病理,转录组学法进行生物信息学分析,蛋白免疫印迹(Western blot)法检测胃窦组织JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3、SOCS3、Bcl-2、Bax蛋白表达,以期进一步探讨莪连颗粒治疗CAG的机制。


1、材料与方法


1.1 材料

1.1.1 动物

18只6周龄无特定病原体(SPF)级雄性SD大鼠由广西医科大学动物实验中心提供。动物生产许可证号:SCXK(桂)2020-0003。动物使用许可证号:SYXK(桂)2020-0004。实验动物饲养于SPF级屏障环境中,相对湿度50%~70%,温度(24±1)℃,明暗交替周期12 h/12 h。本实验方案获得广西医科大学实验动物管理伦理委员会批准(伦理批准号:202007054)。

1.1.2 药物与试剂

莪连颗粒组成:莪术15 g,丹参10 g,当归10 g,黄连3 g,蒲公英30 g,白花蛇舌草30 g,党参10 g,炒白术10 g,甘草6 g,半夏10 g,陈皮6 g,茯苓12 g;由上海中医药大学附属曙光医院提供。

MNNG(批号:M0527),上海梯希爱化成工业发展有限公司;TRIzol、2'-脱氧尿苷5'-三磷酸盐(dUTP)溶液(批号分别为15596018、R0133),美国Thermo Fisher Scientific公司;逆转录酶(批号:1896649),美国Invitrogen公司;E.coli DNA聚合酶I、核糖核酸酶H(RNase H)、尿嘧啶DNA糖基化(UDG)酶、镁离子打断试剂盒(批号分别为m0209、m0297、m0280、E6150S),美国NEB公司;兔单克隆抗体JAK2、兔单克隆抗体p-JAK2、鼠单克隆抗体STAT3、兔单克隆抗体p-STAT3、兔单克隆抗体SOCS3、羊抗兔辣根过氧化物酶(HRP)标记二抗、马抗鼠HRP标记二抗(批号分别为3230、4406、9139、9145、52113、7074、7076),美国CST公司;兔单克隆抗体Bcl-2、兔单克隆抗体Bax(批号分别为T40056、T40051),上海艾比玛特生物医药有限公司;二辛可酸(BCA)蛋白浓度测定试剂盒、组织细胞裂解液(RIPA)(批号分别为P0010、P0013B),上海碧云天生物技术有限公司;聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)凝胶快速制备试剂盒(批号:PG113),上海雅酶生物医药科技有限公司。

1.1.3主要仪器

生物组织包埋机、摊片机(型号分别为KD-BM、KD-P),浙江省金华市科迪仪器设备有限公司;轮转切片机(型号:MICROM HM325),德国Thermo Fisher Microm公司;光学显微镜(型号:ECLIPSE 80i),日本Nikon公司;电泳仪(型号:164-5050),美国BioRad公司;高灵敏电荷耦合器件成像仪(Amersham ImageQuant,型号:800),上海格莱赛生命科技有限公司;紫外/核酸蛋白检测仪(型号:ND-1000),美国NanoDrop公司;生物分析仪(型号:Agilent 2100),美国Agilent公司;因美纳(illumina)基因测序仪(型号:Novaseq 6000),杭州联川生物技术股份有限公司;冷冻高速离心机(型号:Centrifuge5424),德国Eppendorf公司;摇床(型号:TS-1000),海门其林贝尔仪器制造有限公司。

1.2 分组与造模

18只6周龄雄性大鼠普通饲料适应性喂养1周后,随机分为正常组、模型组和莪连颗粒组,每组6只。正常组给予SPF饲料、清洁饮水,模型组、莪连颗粒组采用MNNG综合法构建大鼠模型[9]:(1)200 mg/L MNNG溶液锡箔纸包裹避光自由饮用,每24 h更换1次;(2)喂食含体积分数为0.03%盐酸雷尼替丁的颗粒状SPF级大鼠饲料,进食2 d,禁食1 d;(3)禁食当天下午予体积分数为40%的乙醇灌胃,10 m L/kg体质量。

1.3干预

莪连颗粒组大鼠予莪连颗粒水溶液灌胃,灌胃剂量3.24 g/kg[9],每日1次,每次每只10 m L/kg。正常组、模型组大鼠均予等体积蒸馏水灌胃,每日1次,每次每只10 m L/kg。各组干预周期均为40周。

各组大鼠末次干预后,禁食、水12 h。体积分数为1.5%的戊巴比妥钠(3 mL/kg)麻醉,腹腔注射,体积分数为75%的乙醇喷洒腹部后,迅速开腹剖取全胃,沿胃大弯侧剖开,取胃窦部组织固定于20 mL多聚甲醛溶液(40 g/L),以备后续石蜡切片。剩余胃窦组织置于-80℃冰箱,以备后续检测。

1.4 检测指标与方法

1.4.1 大鼠胃窦组织病理情况

采用HE染色检测大鼠胃窦组织病理形态。胃窦组织切片脱蜡,苏木精染色2 min后予流水冲洗5 min,伊红染色90 s后予流水冲洗10 min,60℃烘箱30 min,中性树脂封片,电子显微镜下观察各组大鼠胃窦组织病理。

1.4.2 RNA提取与建库测序

对各组大鼠胃窦组织样品RNA分离纯化。总RNA量及纯度由NanoDrop ND-1000质控,符合浓度>50μg/L、RIN值>7.0、total RNA>1μg则开展下游实验。在高温条件下通过镁离子打断试剂盒对带有PolyA的mRNA进行片段化(94℃,5~7 min)处理,片段化RNA在逆转录酶作用下合成cDNA,通过E.coli DNA聚合酶I与RNase H完成二链合成,掺入dUTP溶液使双链DNA末端被补齐为平末端。随后,通过在其两端各加入一个A碱基的方式使其与末端带有T碱基的接头连接。UDG酶消化二链后通过PCR(预变性95℃,3 min,98℃变性,8个循环,各15 s;退火到60℃,15 s;72℃,延伸30 s;最后延伸72℃,5 min)生成文库(片段大小300bp±50bp),Illumina NovaseqTM6000完成双端测序(模式PE150)。

1.4.3 生物信息学分析

采用fastQC(https://github.com/OpenGene/fastp)软件质控原始数据(raw data),参数为︱log2FC︱≥1.5,P<0.05,获得高质量的测序数据后通过HISAT2进行基因序列比对,并进行基因表达定量、基因差异分析、富集分析等。

1.4.4 交集靶标富集分析

通过注释、可视化、集成探索(DAVID)数据库(https://david.ncifcrf.gov/home.jsp)对交集基因进行基因功能注释(GO)功能分析和京都基因和基因组百科全书数据库(KEGG)分析,以P<0.05为显著功能和通路的临界值,获取相应数据以绘图。

1.4.5 大鼠胃窦组织相关蛋白表达

采用Western blot法检测各组大鼠胃窦组织JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3、SOCS3、Bcl-2、Bax蛋白表达。提取大鼠胃窦组织后,各组别依次加入10μL蛋白,80 V电压30 min后转120 V电压80 min,湿转法270~300 mA转膜90~120 min,1倍快速封闭液室温摇床15 min后加入一抗(稀释比例均为1∶1 000),4℃冰箱摇床孵育过夜,封闭洗涤缓冲液(TBST)室温摇床漂洗3次,每次10 min,加入HRP标记的对应种属二抗(稀释比例均为1∶1 000),室温孵育60 min,TBST室温摇床漂洗3次,每次10 min,超敏增强型化学发光(ECL)液显影,ImageJ分析条带灰度值,以目的蛋白灰度值/GAPDH灰度值反映目的蛋白相对水平。

1.5 统计学分析

采用SPSS 27.0软件统计分析实验数据。计量资料以表示,多组间比较采用单因素方差分析,采用LSD法组间两两比较,以P<0.05为差异有统计学意义。采用GraphPad Prism 9等软件绘图。


2、结果


2.1 对大鼠胃窦组织病理的影响

正常组大鼠胃黏膜上皮结构完整,腺体形态规则,排列整齐;模型组大鼠胃黏膜腺体萎缩,形态不规则,排列紊乱;莪连颗粒组大鼠胃黏膜腺体形态尚完整,排列尚规律。见图1。

2.2 样本相关性分析

通过Pearson相关系数确定样本间重复性情况以辅助排除离群样本,结果显示正常组1和其他组相关性系数偏低,这可能是个体差异造成的;但是经过造模后,模型组内相关性系数非常接近,表明造模成功;经莪连颗粒干预后,与同组其他样本比较,莪连颗粒组3和正常组相关性更高,表明其经莪连颗粒治疗后基本恢复正常水平。见图2。

图1 各组大鼠胃窦组织病理(苏木精-伊红染色,×40或×100)

2.3差异基因分析

2.3.1差异基因数量

与正常组比较,模型组差异基因有3 595个,其中上调基因有1 203个,下调基因有2 392个;与模型组比较,莪连颗粒组差异基因有561个,其中上调基因有174个,下调基因有387个。见图3、图4。

图2 样本相关性分析

图3 差异基因火山图

2.3.2 GO功能分析

GO功能分析主要包括生物学过程(BP)、细胞成分(CC)、分子功能(MF)。其中,GO-BP分类主要涉及炎症反应(inflammatory response)、免疫反应(immune response)、调节信号受体活性(regulation of signaling receptor activity)等;GO-CC分类主要涉及细胞质(cytoplasm)、细胞核(nucleus)、细胞膜(membrane)等;GO-MF分类主要涉及蛋白质结合(protein binding)、信号受体结合(signaling receptor binding)、ATP结合(ATP binding)等。见图5。

图4 差异基因聚类热图

图5 GO富集圈图

2.3.3 KEGG通路分析

KEGG通路分析分为以下6类:细胞过程主要包括吞噬体(rno04145)、内吞(rno04144)、焦点黏附(rno04510)等;环境信息处理主要包括细胞因子-细胞因子受体相互作用(rno04060)、PI3K-Akt信号通路(rno04051)、细胞黏附分子(rno04514)等;遗传信息处理主要包括内质网中的蛋白质加工(rno04141)、核糖体(rno03010)、泛素介导的蛋白质降解(rno04120)等;人类疾病主要包括癌症通路(rno05200)、冠状病毒病-新型冠状病毒感染(rno05171)、金黄色葡萄球菌感染(rno05150)等;代谢主要包括代谢通路(rno01100)、药物代谢-细胞色素P450(rno00982)、细胞色素P450对异种生物的代谢作用(rno00980)等;有机体系统主要包括造血细胞谱系(rno04640)、趋化因子信号传导途径(rno04062)、成骨细胞的分化(rno04380)等。见图6。

2.4 对大鼠胃窦组织相关蛋白表达的影响

与正常组比较,模型组p-JAK2、p-STAT3、Bcl-2蛋白表达显著升高(P<0.01,P<0.001),SOCS3、Bax蛋白表达显著降低(P<0.01);与模型组比较,莪连颗粒组p-JAK2、p-STAT3、Bcl-2蛋白表达显著降低(P<0.01,P<0.001),SOCS3、Bax蛋白表达显著升高(P<0.05)。见图7。

图6 KEGG富集圈图

图7 各组大鼠胃窦组织JAK2、STAT3、SOCS3、Bcl-2、Bax蛋白表达比较


3、讨论


莪连颗粒由党参、莪术、白花蛇舌草、白术、茯苓、蒲公英、黄连、当归、丹参、半夏、陈皮、甘草组成。其中,党参、莪术、白花蛇舌草健脾、活血、清热解毒为主药;白术、茯苓、蒲公英、黄连、当归和丹参为辅药;佐以半夏、陈皮、甘草。方以四君子汤益气健脾,党参易人参,意在久服缓图,脾气健运则气行湿化。佐以半夏、陈皮健脾燥湿化痰以绝痰湿之源。蒲公英、白花蛇舌草清热解毒,配伍四君子汤驱毒而不伤正。丹参、当归辅助莪术活血化瘀,有效改善胃黏膜血供。莪术得党参、白术补气之资,通络不损气,破血不伤血,丹参、白术得莪术之助,补气而不壅。全方虚实兼顾、攻补兼施、寒温并用、辛开苦降、气血同调,主治CAG伴肠化和(或)异型增生者。

CAG动物模型是研究胃炎癌转化进程中的重要环节,目前CAG造模方法仍存在一定争议,也没有形成统一标准。本次实验采用MNNG自由饮+体积分数为40%的乙醇灌胃+饥饱失常+体积分数为0.03%的雷尼替丁饲料喂饲的MNNG综合法复制CAG模型,HE染色结果显示模型组大鼠胃窦部黏膜腺体萎缩、形态不规则、排列紊乱,表明CAG模型复制成功。

借助转录组测序技术,我们对大鼠胃窦组织样本进行基因表达谱比较分析,并且鉴定了差异表达基因和功能性富集通路。首先,进行各样本基因表达值分布统计及样本相关性分析,了解样本间重复性,辅助排除了离群样本。随后,差异基因火山图以及聚类热图结果显示,较之正常组,模型组差异基因有3 595个,其中上调基因有1 203个,下调基因有2 392个;与模型组比较,莪连颗粒组差异基因有561个,其中上调基因有174个,下调基因有387个,提示莪连颗粒可能通过多靶点发挥治疗CAG作用。接下来,进行差异基因GO及KEGG分析。GO-BP分类主要涉及炎症反应、免疫反应、调节信号受体活性等;GO-CC分类主要涉及细胞质、细胞核、细胞膜等;GO-MF分类主要涉及蛋白质结合、信号受体结合、ATP结合等。KEGG通路分析提示莪连颗粒抗CAG作用机制可能与炎症反应、信号转导、免疫应答等途径密切相关,与趋化因子信号传导途径(rno04062)、PI3K-Akt信号通路(rno04051)、癌症通路(rno05200)等密切相关。其中,趋化因子信号传导途径(rno04062)P值显著,JAK2/STAT3通路在趋化因子信号传导途径(rno04062)中发挥着重要作用。因此,课题组选择JAK2/STAT3通路进行后续实验。

已有研究揭示,JAK2/STAT3信号通路在CAG、胃肠道肿瘤等消化系统疾病中发挥着重要作用[25-26]。JAK2是一种酪氨酸激酶,在生物体各组织内广泛表达,对STAT3发挥正反馈调节作用[15]。激活STAT3可调节细胞增殖、凋亡、肿瘤侵袭等[27]。若STAT3功能失调,可引起癌细胞增殖和凋亡进程受损[28]。当JAK2受到细胞外信号刺激,可与细胞受体结合从而发生磷酸化,而后通过磷酸化转录因子STAT3将上游信号传递到细胞核,诱导炎症反应[29]。然而,JAK2抑制剂AG490可抑制IL-6诱导的STAT3表达[30]。JAK2抑制剂ruxolitinib亦可抑制JAK2下游靶点STAT3和(或)SOCS3表达[31]。SOCS具有极强的蛋白抑制作用,是各种信号通路的抑制剂,被形象地称作“分子刹车”。研究[18,32]表明,当JAK2/STAT3被过度激活时,它们的负反馈调节器SOCS3也会增加。而SOCS3启动子甲基化沉默则会使JAK2/STAT3通路高表达,从而导致细胞增殖,反之,SOCS3高表达可抑制JAK2/STAT3通路,增加细胞凋亡[33]。

细胞凋亡在维持组织平衡方面作用显著,包括Bcl-2、Bcl-xL、Bax等在内的Bcl-2家族已被证明是调节细胞凋亡的重要因素。Bcl-2蛋白可与其他促凋亡蛋白形成异质二聚体,抑制细胞凋亡;Bax可以提高细胞凋亡的敏感性,促进细胞凋亡。随着“慢性浅表性胃炎→CAG→肠化→不典型增生→GC”病情进展,Bcl-2蛋白阳性表达逐渐增高[34]。正常胃黏膜Bax表达率高达88.2%,随着疾病进展,其表达率逐渐降低,在胃腺癌中的表达率已低至43.6%[35]。CAG大鼠Bcl-2蛋白表达升高,而Bax蛋白表达在一定程度上降低[22]。在GC患者中,抗凋亡基因Bcl-2的上调可抵消Bax的促凋亡作用,导致凋亡相关的基因表达失调,从而促进细胞增殖[36]。因此,Bcl-2与Bax异常表达在介导细胞凋亡、参与胃黏膜萎缩中起着重要作用。STAT3作为多条致癌信号通路的交汇基因,可介导下游信号分子Bcl-2参与细胞生长[23,37]。JAK2/STAT3信号通路被激活后,p-STAT3调控Bcl-2、Bax蛋白表达从而抑制细胞凋亡[24,38]。

本研究结果表明,在CAG大鼠胃窦组织中,p-JAK2、p-STAT3蛋白表达明显升高,表明JAK2/STAT3通路被激活,SOCS3蛋白表达降低,导致JAK2/STAT3通路过度活化,Bcl-2蛋白表达升高而Bax蛋白表达下降,凋亡受到抑制,促进了CAG的发生、发展。经莪连颗粒干预后,胃窦组织p-JAK2、p-STAT3蛋白表达明显降低,提示莪连颗粒可抑制CAG大鼠胃窦组织JAK2、STAT3磷酸化,从而抑制JAK2/STAT3通路激活,SOCS3蛋白表达升高,进一步提示JAK2/STAT3通路的抑制,Bcl-2蛋白表达显著降低而Bax蛋白表达显著升高,表明莪连颗粒可通过降低JAK2/STAT3通路下游信号因子Bcl-2/Bax的比值来发挥促凋亡作用。综上,莪连颗粒可能通过调控JAK2/STAT3通路治疗CAG。


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基金资助:国家中医药管理局中医药循证能力建设项目(2019XZZX-XH013);国家中医药管理局国家中医优势专科项目(国中医药医政函[2024]90号,沪卫中管便函[2024]20号);


文章来源:贾庆玲,易志荣,蒋凯林,等.莪连颗粒调控JAK2/STAT3通路治疗慢性萎缩性胃炎的机制[J].上海中医药杂志,2025,59(01):72-79.

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