摘要:目的 探讨参丹方对扩张型心肌病(DCM)模型大鼠心脏的保护作用及机制。方法 用腹腔注射2.5 mg·kg-1阿霉素建立DCM模型大鼠。将模型大鼠随机分为模型组和低、中、高剂量实验组,每组8只;另取8只正常大鼠作为正常组。低、中、高剂量实验组分别灌胃给予1.46、2.92、5.84 g·kg-1参丹方溶液,剂量以10 mL·kg-1·d-1计算,正常组和模型组均灌胃给予等量0.9%NaCl。5组大鼠每日给药1次,连续给药28 d。用酶联免疫吸附试验法检测N末端脑钠肽前体(NT-proBNP)、肌钙蛋白T(cTn-T)和肌酸激酶(CK)的含量,用蛋白质印迹法检测磷脂酰肌醇3-激酶/蛋白激酶B(PI3K/AKT)蛋白的表达情况。结果 中、高剂量实验组和模型组、正常组的NT-proBNP水平分别为(963.40±46.67)、(903.11±82.76)、(1 457.56±66.28)和(789.79±40.53)pg·mL-1,cTn-T水平分别为(559.68±31.05)、(521.51±19.29)、(685.53±17.16)和(452.67±30.76)pg·mL-1,CK水平分别为(39.23±6.85)、(34.61±8.55)、(55.79±0.61)和(27.79±1.76)ng·mL-1,PI3K蛋白相对表达水平分别为2.62±0.21、3.30±0.10、0.76±0.24和3.54±0.16,AKT蛋白相对表达水平分别为2.20±0.36、3.13±0.32、0.92±0.24和3.79±0.19。模型组的上述指标与中、高剂量实验组相比较,差异均有统计学意义(均P<0.01)。结论 参丹方可能通过PI3K/AKT信号通路,改善DCM大鼠心肌细胞凋亡及心肌纤维化。
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扩张型心肌病(dilated cardiomyopathy, DCM)发病率逐年增高,且预后不良。目前,西医治疗手段虽然能在一定程度上可改善DCM患者的心脏功能,但仍未改善DCM患者的生活质量及死亡率[1]。根据DCM的临床表现,可归为中医“心悸”“胸痹”“喘证”“心胀”“心水”等范畴[2,3]。中医药对DCM有丰富的理论研究和治疗经验,在改善患者症状和预后等方面具有明显的优势[4]。马静教授长期致力于DCM的中西医治疗研究,提出该病的基本病因病机为“气虚血瘀”,正虚为本,血瘀为标。本研究建立DCM模型,探讨参丹方对DCM的干预作用,为参丹方的后续临床应用提供新的科学依据。
一、材料与方法
1 材料
动物雄性SD大鼠,鼠龄6周,体质量(200±20)g, 购自空军军医大学实验动物中心。动物许可证号:SCXK(陕)2019-001。本研究经陕西中医药大学实验动物伦理委员会审核批准(伦理批号:SUCMDL20211115002)。
试剂丹参,批号:A2066021,产地:山东,人参,批号:A1129571,产地:黑龙江,炙黄芪,批号:A2089211,产地:甘肃,当归,批号:A2121621,产地:甘肃,红花,批号:A2080891,产地:四川,车前子,批号:A1050161,产地:辽宁,桂枝,批号:A3010911,产地:云南,均由广东一方药业制药有限公司生产,均经陕西中医药大学沈霞教授鉴定为正品。盐酸阿霉素,规格:每瓶50 mg, 批号:A183027,由阿拉丁生化科技股份有限公司生产;N末端脑钠肽前体(N-terminal brain natriuretic peptide precursor, NT-proBNP)、肌钙蛋白T(cardiac troponin -T,cTn-T)、肌酸激酶(creatine kinase, CK)试剂盒,均由上海谷研实业有限公司生产;苏木精-伊红(hematoxylin-eosin, HE)染色试剂盒、Masson染色试剂盒,均购自Beyotime(中国)公司;BCA蛋白浓度测定试剂盒,购自碧云天有限公司;磷脂酰肌醇-3激酶(phosphatidylinositol-3 kinase, PI3K)、蛋白激酶B(protein kinase B,AKT),均由美国CST公司生产。
仪器Vevo3100超高分辨率小动物超声影像系统,加拿大VisualSonics公司产品;Tecan infinite M200 Pro酶标仪,澳大利亚Tecan公司产品;Powerpac基础型蛋白电泳仪,美国Bio-Rad公司产品。
2 实验方法
2.1 溶液配制
将参丹方颗粒按照方剂比例(丹参10 g、人参10 g、炙黄芪20 g、当归15 g、红花10 g、车前子30 g、桂枝6 g)进行混合,溶于蒸馏水中制成混悬液,按照1.46、2.92、5.84 g·kg-1参丹方溶液的给药剂量配制,现用现配。
2.2 模型建立[5]5]
根据大鼠体质量给予腹腔注射2.5 mg·kg-1阿霉素,每周1次,连续6次,累积计量达到15 mg·kg-1后建立DCM模型。模型制备成功后进行心动超声测量,当大鼠左心室射血分数(left ventricular ejection fraction, LVEF)<60%,左心室舒张末期内径(left ventricular internal dimension-diastole, LVIDd)、左心室收缩末期内径(left ventricular internal dimension in systole, LVIDs)升高,短轴缩短率(fractional shortening, FS)降低且P<0.05,表明DCM大鼠模型制备成功。
2.3 动物分组与给药方法
将模型大鼠随机分为模型组和低、中、高剂量实验组,每组8只;另取8只正常大鼠作为正常组。低、中、高剂量实验组分别灌胃给予1.46、2.92、5.84 g·kg-1参丹方溶液(分别为0.5倍临床药量、临床等效药量和1.0倍临床药量),剂量以10 mL·kg-1·d-1计算;正常组和模型组均灌胃给予等量0.9%NaCl。5组大鼠每日给药1次,连续给药28 d。
2.4 用超声心动图检测大鼠的心功能[6]6]
提前将大鼠左胸前脱毛并擦拭干净,经异氟烷吸入麻醉后,仰卧位固定,将探头放于心前区,超声仪频率为6~12 MHz, 记录LVEF、FS、LVIDd及LVIDs。
2.5 用ELISA法检测NT-proBNP、cTn-T和CK含量[7]7]
采集各组实验大鼠血液5 mL,离心后,取上清液,备用。在96孔板中,分别加入不同浓度标准品稀释液每孔50 μL后,加入血清每孔50 μL、工作液A每孔50 μL,摇匀后,加盖覆膜,孵育;弃去孔内液,加入洗涤液每孔350 μL,用滤纸拍干;分别加工作液B每孔100 μL、底物溶液每孔90 μL后,恒温箱孵育;每孔加入终止液50 μL,并在混合后立即测量光密度(optical density, OD)值;根据绘制的标准曲线计算样品中NT-proBNP、cTn-T、CK含量。
2.6 用HE染色法和Masson染色法检测心肌组织的病理变化
HE染色:心肌组织切片厚度为5 μm; 二甲苯透明,梯度乙醇浸泡;苏木精5 min, 盐酸溶液分化3 s, 伊红3 min; 放入梯度乙醇各3 min, 二甲苯透明10 min, 封片。Masson染色:切片脱蜡水化(与HE染色相同);苏木精染色5 min, 丽春红染色5 min, 磷钼酸处理3 min, 苯胺蓝复染5 min, 最后进行脱水封片。
2.7 用蛋白质印迹法检测心肌组织中相关蛋白的表达水平[8]8]
用十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide Gel electropheresis, SDS-PAGE)制备试剂盒,电泳至溴酚蓝里最底部约1 cm即可终止电泳;100%甲醇激活PVDF膜2 min; 300 mA恒流30 min, 冰中进行;TBST洗1次,加入5%脱脂牛奶,放于脱色摇床上,室温30 min; 按说明书稀释一抗,4 ℃过夜,TBST洗4遍×每次5 min, 摇床上二抗室温孵育1 h; 重复TBST洗4遍,加入ECL发光液,曝光,保存原始图。
3 统计学处理
用SPSS 20.0软件进行统计分析。实验数据用x¯±s
表示,组间比较用单因素方差分析法(LSD-ANOVA)。
二、结果
1 5组大鼠超声心动图的比较
低、中、高剂量实验组分别给予1.46、2.92、5.84 g·kg-1参丹方溶液;正常组和模型组均给予等量0.9%NaCl。
心脏超声检测结果显示:与正常组比较,模型组大鼠的LVIDd和LVIDs均显著升高,LVEF和FS均显著下降,差异均有统计学意义(均P<0.01);与模型组相比,低、中、高剂量实验组的LVEF和FS均显著升高,中、高剂量实验组的LVIDd和LVIDs均显著降低,差异均有统计学意义(均P<0.01)。结果见表1。
2 5组大鼠血清NT-proBNP、CK和cTn-T水平的比较
ELISA法检测结果显示:与正常组相比,模型组大鼠血清NT-proBNP、CK和cTn-T水平均显著升高,差异均有统计学意义(均P<0.01);与模型组相比,低、中、高剂量实验组大鼠血清NT-proBNP、CK和cTn-T水平均有不同程度的降低,差异均有统计学意义(均P<0.01),尤以高剂量实验组最为显著。结果见表2。
3 5组大鼠心肌组织的病理改变
HE染色结果显示:正常组心肌组织形态、结构正常,细胞核居中,心肌纤维排列整齐,未见明显的组织学改变;模型组心肌组织受损,心肌细胞肥大,细胞核变形甚至消失,心肌纤维断裂,细胞间隙增宽;与模型组相比,低、中、高剂量实验组病变区域及心肌纤维化明显逐渐好转,心肌细胞排列逐渐整齐。结果见图1。
Masson染色结果显示:正常组可见绝大部分为正常心肌组织,有少许胶原纤维;模型组可见大量的蓝色胶原纤维,将心肌组织分隔成块状,血管周围细胞外基质增多;低、中、高剂量实验组可见胶原纤维区域逐渐变小,肌纤维排列逐渐整齐,心肌纤维化逐渐减低。结果见图1。
4 5组大鼠心肌组织中PI3K、AKT、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-9蛋白表达的比较
蛋白质印迹实验结果显示:与模型组比较,中、高剂量实验组大鼠心肌组织中PI3K、AKT、Bcl-2及Bcl-2/Bax蛋白相对表达水平均显著上升,caspase-3、caspase-9和Bax蛋白相对表达水平均显著下降,差异均有统计学意义(P<0.05,P<0.01);模型组的上述指标与正常组比较,差异均有统计学意义(均P<0.01),结果见表3和图2。
表1 5组大鼠心脏超声检测结果的比较(x¯±s)
表2 5组大鼠血清N末端脑钠肽前体(NT-proBNP)、肌钙蛋白T(cTn-T)和肌酸激酶(CK)水平图 1 5组大鼠心肌组织的苏木精-伊红染色(Ⅰ)和Masson染色(Ⅱ)结果(×200)
表3 5组大鼠心肌组织磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)、蛋白激酶B(AKT)、B淋巴细胞瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)、胱天蛋白酶-3(caspase-3)和caspase-9蛋白表达水平的比较图 2 5组大鼠心肌组织中PI3K、AKT、Bcl-2、Bax、caspase-3和caspase-9蛋白的表达情况
三、讨论
DCM的发病机制复杂,且治疗效果并不理想。参丹方可明显改善DCM晚期患者的心悸、水肿、喘憋、短气等症状,尤适用于DCM晚期水肿胀满之症,具有益气活血、温经通脉、利水消肿之功效。
在正常情况下,PI3K/AKT信号通路的激活对心肌细胞的生长和代谢具有重要的调节作用,可促进心肌细胞的存活以及心肌细胞的葡萄糖摄取和氧化代谢,从而提高心肌细胞的能量供应,维持正常的结构和功能[9,10]。本实验研究表明,阿霉素可显著降低心肌组织中PI3K/AKT蛋白表达,而给予参丹方干预后,能够激活PI3K/AKT蛋白表达,从而起到保护心肌的作用。凋亡是由caspases编排的,caspases-3是检测细胞凋亡的可靠标志物[11]。同时,细胞凋亡的内在途径受到Bcl-2蛋白家族的严格调控。促凋亡的Bax可以通过渗透线粒体外膜并随后启动半胱天冬酶级联,使细胞发生程序性死亡[12]。因此,Bax的活性受到Bcl-2家族内外复杂蛋白网络的精确控制。本研究结果发现,参丹方能通过激活PI3K/AKT信号通路使Bax、caspase-3、caspase-9蛋白表达水平均显著降低,说明参丹方能通过调控PI3K/AKT发挥抗心肌细胞凋亡作用,有望成为新的治疗DCM的有效中药复方。亦有研究发现,运用益气活血温阳利水法治疗DCM效果十分确切,可有效改善患者的临床症状与心肌功能,提高患者的生活质量,且临床用药安全能够得到有效保障[13],这与本研究结果相似。
参考文献:
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基金资助:国家中医药管理局中医药科学技术研究专项基金资助项目(GZY-KJS-2021-004);陕西省中医药管理局中西医结合临床协同创新基金资助项目(2020-ZXY-001);
文章来源:陈伟佳,白烨升,祁玉营等.参丹方通过PI3K/AKT信号通路改善扩张型心肌病大鼠心肌细胞凋亡的研究[J].中国临床药理学杂志,2023,39(21):3116-3120.
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