摘要:轮状病毒是引起婴幼儿和幼龄动物腹泻的主要病原体之一,全世界每年因感染RV而死亡的婴幼儿约为21.5万人,目前尚无抗RV特效药。研究表明,益生菌作为对宿主有益的一类微生物,可缓解由RV引起的腹泻,并可通过下调A20表达、降低TLR3诱导的小肠损伤和上调细胞因子表达等,提高机体抗RV免疫状态。本文对益生菌在抗RV感染及其对宿主免疫调节作用等方面作一综述,为RV的防治提供参考。
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轮状病毒是引起婴幼儿和幼龄动物腹泻的主要病原体之一[1],全世界每年因感染RV而死亡的婴幼儿约为21.5万人,其中大多数发生在发展中国家[2]。目前尚无抗RV特效药,接种减毒活疫苗是防控RV腹泻最经济有效的手段,但在发展中国家由于疫苗接种率较低,使该病在发展中国家尚未得到控制[3]。益生菌是一类对宿主有益的活性微生物,可维持机体微生态平衡、调节免疫反应、减少传染性疾病以及肠道炎症的发生等[4],因此使用益生菌是临床中预防RV感染的一个重要方案。近年来已有大量研究证实,益生菌可缩短RV腹泻的持续时间、减少腹泻发病次数、增强RV弱毒苗的免疫效果等[5,6,7]。研究表明,益生菌的抗RV作用可能与调节宿主免疫应答有关,但具体机制仍不明确[8]。因此,对益生菌抗RV作用及其对宿主免疫调节的深入研究可为制定有效的RV防治策略提供理论依据。
1、益生菌抗RV作用
1.1益生菌在人体中抗RV作用
在抗人肠道病毒感染中,应用最多的菌株之一是鼠李糖乳杆菌GG株。研究发现,鼠李糖乳杆菌GG可明显缩短感染RV患者的腹泻持续时间以及降低婴幼儿腹泻相关疾病发病率[9]。同时发现,患儿在接受益生菌治疗后第3天,腹泻症状明显减轻,表明益生菌的治疗效果主要通过激活先天免疫应答来发挥作用,而不是通过诱导适应性免疫应答[10]。此外,LAZARUS等[6]证明,婴儿在接种RV减毒灭活苗前后口服益生菌,可有效提高血清中IgA浓度。在阿根廷,腹泻是儿童中常见疾病,BARDACH等[11]对此进行一项随机试验发现,口服益生菌酸奶(含有鼠李糖乳杆菌CRL1505)的儿童,感染RV概率与对照组的66%相比,下降至34%,发病严重程度明显降低,证明鼠李糖乳杆菌可增强黏膜免疫、降低儿童肠道疾病发病率[12]。因此,推测口服含有鼠李糖乳杆菌CRL1505的酸奶有助于减少RV感染相关疾病的发生。
除了鼠李糖乳杆菌具有抗RV作用外,罗伊氏乳杆菌也可缓解RV引起的腹泻[13]。SARKER等[14]还发现,干酪乳杆菌菌株ST11也可明显缓解RV引起的腹泻,但对严重腹泻无效。事实上,并不是所有菌株均能缓解RV引起的腹泻。MAJAMAA等[15]对口服鼠李糖乳杆菌GG、嗜酸乳杆菌或嗜热链球菌的6至35个月大感染RV儿童进行研究,发现仅口服鼠李糖乳杆菌GG的儿童腹泻持续时间缩短,且该保护作用与肠黏膜和血清中IgA浓度以及分泌RV特异性抗体的细胞数量相关。但益生菌的疗效可随着剂量、细菌菌株及宿主年龄、健康状况和营养状况而变化。因此,在选择益生菌治疗时,应从多方面考虑,制定最佳治疗方案,充分发挥益生菌作用。
1.2益生菌在动物中抗RV作用
益生菌除了在人体中具有抗RV功效外,一些研究发现,其在动物体内也具有抗RV作用[16]。YASUI等[17]通过给乳鼠口服RV疫苗以及饲喂短双歧杆菌YIT4064,发现其抗RV感染能力高于单独服用RV疫苗的乳鼠。此外,双歧杆菌可减轻小鼠因感染RV引起的腹泻以及增加粪便、血清中特异性IgA水平[18]。另外,THOREUX等[19]通过给感染RV的幼鼠饲喂干酪乳杆菌DN-114001发酵的酸奶,发现腹泻程度减轻,小肠中空泡以及肠切片中RV含量减少,证实干酪乳杆菌DN-114001可缓解RV引起的相关肠道损伤。PANT等[20]证明,鼠李糖乳杆菌GG可显著降低BALB/c幼鼠腹泻的严重性。这些发现与先前在新生儿群体中的研究结论一致。此外,对新生仔猪的研究发现,鼠李糖乳杆菌GG和双歧杆菌Bb12的共同使用可减轻腹泻和降低RV感染率[21]。在近几年的研究中发现,两种基因型和表现型不同的罗伊氏乳杆菌菌株DSM17938和ATCCPTA6475,均可缩短感染RV的新生小鼠腹泻持续时间以及增强其肠道微生物多样性[22]。尽管人类临床试验在各个方面已经标准化,但动物实验仍存在实验变量有限和观察参数不统一的问题。因此,加强动物方面的研究,可有效促进益生菌在动物中的广泛应用。
2、益生菌抗RV感染的免疫调节机制
2.1下调A20表达
多项研究已经证实,益生菌作为肠道菌群一部分,能够调节机体的免疫反应,增强机体抗病毒能力,其调节宿主抗RV免疫的机制之一就是下调A20表达[23,24]。RV感染机体后病毒基因组dsRNA激活模式识别受体(PRR),如Toll样受体3、视黄酸诱导基因-1和黑素瘤分化相关基因-5。PRR激活后,通过干扰素调节因子-3介导的细胞信号传导途径来上调Ⅰ和Ⅲ型IFN表达,启动抗病毒感染的先天性免疫应答。同时,激活NF-κB诱导促炎细胞因子和趋化因子分泌,促使免疫细胞募集和DC激活,在肠上皮细胞中建立抗病毒免疫[5]。然而,MACPH-ERSON等[23]用poly(I:C)刺激HT29细胞模拟RV感染引起的免疫应答过程,发现poly(I:C)能刺激HT29细胞上调A20表达。A20是肿瘤坏死因子α(TNF-α)诱导内皮细胞反应的一个诱导性表达蛋白,具有去泛素功能,可抑制NF-κB的活化,干扰抗病毒的先天性免疫应答。此外,SAITOH等[25]也报道了A20可以抑制IRF3激活,还可通过与IKK-i/IKKε相互作用抑制IFN介导的免疫应答。但ISHI-ZUKA等[24]研究发现,双歧杆菌MCC12和MCC-1274能显著降低RV感染细胞中A20表达,使IRF-3活化,诱导IL-6、IL-10和IL-12持续分泌以及增加抗病毒因子IFNα、IFNβ、MxA和RNaseL分泌,增强机体抗病毒免疫状态。但益生菌使IRF3活化的具体机制仍待研究。
2.2减少TLR3诱导的小肠损伤
TLR是先天免疫中最重要的受体之一,通常识别细菌细胞壁结构或病毒复制中间产物dsRNA,在病原体识别和宿主防御中发挥重要作用。然而,异常的TLR信号会造成组织损伤甚至免疫性疾病[26]。TADA等[27]研究发现,鼠李糖乳杆菌CRL1505(Lr1505)和植物乳杆菌CRL1506(Lp1506)通过调节促炎细胞因子产生和IEC与肠淋巴细胞(intestinalepitheliallymphocyte,IEL)相互作用,减少TLR3诱导的小肠损伤。IEC和IEL是针对包括病毒在内的病原体的第1道防线,它们之间相互作用对于维持适当免疫稳态至关重要。
研究发现,NK受体在TLR3诱导的小肠损伤中发挥关键作用[28]。NK受体是免疫系统中另外一种重要受体,包括抑制性受体和激活性受体,NK细胞活性通常由抑制性受体控制,抑制性受体可识别正常细胞表达的抑制性受体配体。如果抑制性受体配体减少或激活性受体配体增加,正常细胞将会成为NK细胞杀伤的目标。NKG2D是最具特征的激活性受体,能够识别在感染和细胞应激条件下上调表达的自身配体。RAE1是NKG2D的高亲和性配体,研究发现,poly(I:C)依赖IEC衍生的IL-15诱导CD8ααIEL表达NKG2D受体,TLR3信号刺激IEC表达NKG2D配体RAE1[29]。EBERT等[30]证明,RAE1通过与IEL表达的NKG2D相互作用诱导IEC和黏膜损伤。HANSEN等[31]利用无菌小鼠证实,益生菌可下调NKG2D配体表达。TADA等[27]用poly(I:C)处理小鼠发现,Poly(I:C)通过增加CD3+NK+1.1和CD8αα+NKG2D+细胞以及促炎介质(TNF-α、IL-1β、IFNγ、IL-15、RAE1、IL-8)诱导小肠组织损伤。然而,在TLR3活化之前用Lr1505和Lp1506处理小鼠,TNF-α、IL-15、RAE1表达量减少。此外,用乳酸杆菌处理小鼠,CD3+NK+1.1、CD3+CD8αα+和CD8αα+NKG2D+细胞减少,表明这些乳酸杆菌可减少小肠组织损伤,改善小鼠健康状态[7,27]。
2.3上调细胞因子表达调节先天性免疫
VILLENA等[32]为深入研究CRL1505菌株免疫调节机制,在体外对鼠李糖乳杆菌CRL1505、IEC和APC之间的作用进行了评估,发现鼠李糖乳杆菌CRL1505诱导IEC中IFNα和IFNβ表达。此外,在poly(I:C)刺激之后可不依赖TLR-2或TLR9上调Ⅰ类IFN表达。CRL1505菌株能通过IEC的TLR-2诱导IL-6和TNF-α表达。同时,还能显著增加小肠APC上细胞因子产生,且增加TLR2诱导的Th1类应答,上调MHC-Ⅱ、IL-1β、IL-6和IFNγ表达,也可明显上调IL-10表达[33]。这些研究为解释鼠李糖乳杆菌CRL1505对感染病毒儿童的肠道保护作用提供了科学依据。最近,ZHANG等[34]提出用鞭毛蛋白激活先天免疫应答来预防和治疗RV感染引起的疾病。研究发现,同时给急性和慢性感染RV的小鼠腹膜内注射鞭毛蛋白,可通过TLR5/NLRC4活化降低感染严重性,促进IL-22和IL-18分泌。虽然鞭毛蛋白与益生菌的抗RV感染作用机制实质上不同,但二者均依赖于增强先天免疫防御病毒感染。
3、结语
益生菌作为对宿主有益的一类活性微生物,可缩短RV腹泻时间、减少腹泻次数以及增加RV弱毒苗免疫效果等。但不是所有菌株均能有效预防和治疗RV感染引起的病毒性腹泻。因此,细致研究益生菌不同菌株抗RV作用差异以及复合益生菌协同作用,有助于制定最佳治疗方案,同时促进抗RV感染的功能性食品和益生菌药物开发。此外,益生菌还可通过下调A20表达、减少TLR3诱导的小肠损伤和上调细胞因子表达,提高宿主抗RV免疫状态,但具体的免疫调节机制仍待明确。因此,对益生菌抗RV免疫调节机制深入研究,将为预防和治疗RV感染引起的疾病提供理论依据。
仝晓丹,冉旭华,闻晓波.益生菌抗轮状病毒感染免疫调节机制的研究进展[J].中国生物制品学杂志,2020,33(06):719-721+724.
基金:黑龙江省自然科学基金联合引导项目(LH2019C052).
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