摘要:目的探讨膜联蛋白A2在登革病毒Ⅱ型入胞过程中的作用。方法通过敲低ANXA2和S100钙结合蛋白A10(S100A10)表达以及抗体阻断实验验证ANXA2在DENV-2复制周期中的作用,并进一步通过激光共聚焦显微镜观察、免疫共沉淀分析明确ANXA2与DENV-2E蛋白的相互作用。结果DENV-2感染ANXA2和S100A10敲低的细胞中,DENV-2RNA水平显著降低;ANXA2抗体和DENV-2E蛋白抗体可有效抑制DENV-2的入胞效率,细胞内病毒RNA水平显著低于对照组;此外,ANXA2在DENV-2感染细胞中由细胞质募集到细胞膜上,与DENV-2E蛋白有相互作用。结论ANXA2是DENV-2入胞过程中重要的宿主分子,有望为抗DENV-2研究提供新的靶点。
加入收藏
登革病毒是引起登革热的重要病原体,登革热广泛流行于热带和亚热带地区,严重危害人类健康,目前尚无特异性治疗手段,疫苗对人群的保护效果亦不理想[1,2]。DENV通过受体介导的吞噬作用完成其入胞过程,目前已鉴定的DENV受体包括但不局限于DC-SIGN、L-SIGN、CD206和CLEC5等分子[3,4,5]。DENV入胞的分子机制尚不完全清楚,研究DENV如何入胞对寻找抗病毒靶点有重要意义[6,7]。膜联蛋白A2属于钙离子依赖的磷脂结合蛋白家族,以单体和异源四聚体两种形式存在,单体主要存在于细胞质中,参与细胞器膜的组装、溶解和修复;异源四聚体主要存在于细胞膜表面,由两分子的ANXA2与两分子的S100钙结合蛋白A10(S100A10)形成[8]。多项研究表明,ANXA2可转运至细胞外膜,作为受体参与人乳头瘤病毒16、人类免疫缺陷病毒、呼吸道合胞病毒的吸附和侵入[9,10]。目前,DENV-2在4个DENV血清型中传播最为广泛,尚无研究报道ANXA2是否在DENV-2入胞过程中发挥作用。鉴于ANXA2及其复合物在多种病毒入胞过程中的关键作用,本研究拟观察ANXA2在DENV-2感染细胞后的细胞内定位并探究ANXA2功能抑制后对DENV-2入胞的影响,为DENV-2感染的分子机制和抗DENV-2靶点的筛选提供实验依据。
1、材料与方法
1.1材料
DMEM和RPMI-1640培养基、0.25%胰蛋白酶均购自美国赛默飞公司,胎牛血清购自杭州四季青有限公司,JetPrime转染试剂购自法国Polyplus-transfection公司,总RNA抽提试剂盒购自美国Omega公司,反转录试剂盒和SYBRGREENⅡ两步法实时荧光定量PCR试剂盒购自大连宝生物公司,兔抗ANXA2多克隆抗体、兔抗S100A10多克隆抗体、鼠IgG抗体、兔抗HA标签单克隆抗体、488标记羊抗兔多克隆抗体和羊抗鼠Cy3标记多克隆抗体均购自生工生物工程(上海)股份有限公司,鼠抗DENVE蛋白抗体购自美国GeneTex公司。shRNA引物(见表1)、实时荧光定量多聚核苷酸链式反应(real-timequantitativepolymerasechainreaction,RT-qPCR)引物(见表2)和PCR引物(见表3)均由北京擎科新业生物技术有限公司合成。
表1shRNA序列
表2RT-qPCR引物
表3PCR引物
1.2细胞培养与DENV-2扩增
Huh-7细胞和293T细胞用含10%血清的DMEM培养基置于37℃、5%CO2孵箱中培养,C6/36细胞用含10%血清的RPMI-1640培养基置于28℃、5%CO2孵箱中培养。
DENV-2由C6/36细胞扩增。DENV-2[感染复数(multiplicityofinfection,MOI)=0.01]感染C6/36细胞2h后,换含2%血清的RPMI-1640培养基继续培养6~8d,细胞出现明显病变后,收集培养上清,10000rpm4℃离心15min,去除细胞碎片,上清分装后于-80℃冰箱保存。
1.3shRNA转染
针对ANXA2和S100A10基因,每个基因设计3对shRNA引物(#1,#2,#3)。将shRNA引物(见表1)通过同源重组方式退火进入pLKO.1载体并测序确认,构建转录shRNA的质粒。Huh-7细胞以2×105cell/ml接种6孔板,按照JetPrime试剂盒说明书分别转染shANXA2、shS100A10和阴性对照(shNC),72h后0.25%胰蛋白酶消化转染细胞后铺2组6孔板。一组提RNA,RT-qPCR检测shRNA抑制效率,另一组以DENV-2(MOI=1)感染,感染2h后换10%DMEM培养基,期间每隔15min晃动培养板使DENV-2充分吸附。感染后24h,PBS洗3次彻底去除上清中病毒RNA,然后提取总RNA,RT-qPCR检测细胞内病毒RNA水平。
1.4RT-qPCR
所有样本总RNA用美国Omega公司RNA提取试剂盒提取,RNA定量后用TaKaRa反转录试剂盒反转录1μgRNA为cDNA,用TaKaRaSYBRGREENⅡ实时荧光定量PCR试剂盒扩增目的基因片段和内参基因β-actin片段,其中NS5为DENV-2RNA片段引物(见表2)。
1.5抗体阻断实验
Huh-7细胞以2×104个/孔铺12孔板,24h后DENV-2(MOI=1)分别与ANXA2抗体、S100A10抗体、DENV-2E蛋白抗体、鼠IgG抗体加入Huh-7细胞中共孵育2h,PBS洗3次后,加10%DMEM培养基于37℃、5%CO2孵箱中继续培养12h。PBS洗3次去除上清中病毒RNA,提取总RNA,检测DENV-2RNA水平。
1.6激光共聚焦显微镜分析ANXA2与DENV-2共定位
Huh-7细胞以5×103个/孔爬片,24h后DENV-2(MOI=5)感染Huh-7细胞,置于37℃孵箱中孵育2h,每15min晃动培养板使DENV-2充分吸附。2h后用PBS洗爬片5次,用4%的多聚甲醛固定10min后PBS洗2次,0.5%TritonX-100作用10min后PBS洗2次。3%牛血清白蛋白室温封闭1h后,PBS洗3次。用3%BSA1∶300稀释一抗(兔抗ANXA2多克隆抗体,鼠抗DENVE蛋白抗体),4℃过夜孵育。第2dPBS洗4次后,3%BSA1∶200稀释对应二抗(488标记羊抗兔多克隆抗体,羊抗鼠Cy3标记多克隆抗体),室温孵育1h后PBS洗5次。4',6-二脒基-2-苯基吲哚染核,50%甘油封片,激光共聚焦显微镜下观察。
1.7载体构建
从细胞总cDNA中扩增ANXA2和S100A10基因片段,克隆进pCAGGS-HA(C末端)载体中,分别构建pCAGGS-ANXA2-HA和pCAGGS-S100A10-HA(引物见表3)。
1.8免疫共沉淀实验
分别将pCAGGS-ANXA2-HA和pCAGGS-S100A10-HA质粒转染293T细胞,48h后以DENV-2(MOI=1)感染。感染后24h收集细胞,裂解后将裂解上清与HA磁珠在4℃孵育过夜,充分洗涤磁珠后煮沸10min,离心并收集上清,蛋白免疫印迹法检测蛋白水平,兔抗HA标签单克隆抗体检测ANXA2和S100A10蛋白水平,鼠抗DENVE蛋白抗体检测DENV-2E蛋白水平。
1.9统计学处理
采用GraphPadPrism6.0软件对实验数据进行统计学分析,统计方法为独立样本t检验,P<0.05表示差异有统计学意义。
2、结果
2.1ANXA2和S100A10低表达影响DENV-2感染
基因敲低实验结果显示,3对针对ANXA2的shRNA中,与对照组相比,1号shRNA可抑制63.6%ANXA2mRNA表达(t=6.222,P=0.003),2号shRNA可抑制77.8%ANXA2mRNA表达(t=7.671,P=0.002),3号shRNA无抑制效果(t=0.037,P=0.972)(见图1A);3对针对S100A10的shRNA中,与对照组相比,1号shRNA无抑制效果(t=2.096,P=0.104),2号shRNA可抑制85.1%S100A10mRNA表达(t=6.382,P=0.003),3号shRNA可抑制41.4%S100A10mRNA表达(t=2.842,P=0.047)(见图1B);ANXA2敲低的细胞中,DENV-2RNA水平为对照组的14.2%(t=14.860,P=0.000),S100A10敲低的细胞中,DENV-2RNA水平为对照组的44.7%(t=6.881,P=0.002)(见图1C)。
图1ANXA2和S100A10低表达细胞中DENV-2RNA的复制水平
A.对ANXA2基因的抑制效率;B.对S100A10基因的抑制效率;C.选择抑制效率更好的ANXA2#和S100A10#2检测DENV-2RNA水平;*.P<0.05;**.P<0.01;***.P<0.001
2.2ANXA2抗体可有效阻断DENV-2感染Huh-7细胞
抗体阻断实验结果显示,与正常对照组相比,鼠IgG抗体不影响DENV-2感染,DENV-2E蛋白抗体处理组中DENV-2RNA水平降低96.7%(t=38.910,P=0.000),S100A10抗体处理组中DENV-2RNA水平降低25.8%(t=6.982,P=0.020),ANXA2抗体处理组中DENV-2RNA水平降低56.7%(t=17.100,P=0.003)(见图2)。
2.3ANXA2与DENV-2E蛋白在病毒入胞阶段的共定位分析
激光共聚焦显微镜结果显示,未感染组细胞中DENV-2E蛋白无染色,ANXA2均匀分布在细胞中;DENV-2感染组细胞中,ANXA2在细胞膜区域有明显聚集,与点状DENV-2E蛋白染色有共定位(见图3)。
图2不同抗体抑制DENV-2入胞实验中RNA的相对水平
CTRL.正常对照组(不加任何抗体);anti-E.DENV-2E蛋白抗体;anti-S100A10.S100A10抗体;anti-ANXA2.ANXA2抗体;*.P<0.05;**.P<0.01;***.P<0.001
2.4ANXA2、S100A10与DENV-2E蛋白相互作用
免疫共沉淀结果显示,空载体与DENV-2E蛋白无相互作用,带HA标签的ANXA2和S100A10均与DENV-2E蛋白存在相互作用(见图4)。
3、讨论
关于DENV入胞机制研究一直广受重视,目前已有研究报道与DENV入胞相关的多种受体和辅受体[3,11,12]。这些受体和辅受体,从功能上可大致分为两类:一类是氨基聚糖类,如带高电荷的硫酸乙酰肝素、神经酰胺等,可以作为受体与所有血清型DENV结合,是吸附病毒的始动因子,起到聚集病毒颗粒的作用;另一类是分子量大小不同的蛋白质,如热休克蛋白、GRP78、LAMR1、DC-SIGN等,这类分子在不同血清型、病毒株侵入靶细胞过程中具有特异性。综合这些研究结果可以发现,DENV-2与受体结合步骤多且过程复杂,涉及不同的病毒吸附蛋白及多个靶细胞受体,鉴定新的DENV-2受体和辅受体有助于理解DENV-2入胞机制。本文探讨了ANXA2在DENV-2入胞过程中的作用,通过一系列实验明确了ANXA2功能异常可显著影响DENV-2的入胞效率,为DENV-2入胞机制研究提供了更多实验依据。
ANXA2是一种重要的钙离子依赖性磷脂结合蛋白,分子量约为38kDa,参与细胞的多种生理生化活动,如胞膜运动、囊泡运输、胞吞和胞吐作用等。在细胞受到刺激后,ANXA2从细胞质转移到细胞膜,与S100A10形成异源四聚体[10]。本研究通过激光共聚焦显微镜观察到DENV-2吸附至Huh-7细胞的过程中,可诱导细胞质内分布的ANXA2募集到细胞膜上,并且与DENV-2E蛋白共定位,而S100A10是否在此过程中起作用还需继续研究;免疫共沉淀实验进一步明确了DENV-2E蛋白与ANXA2和S100A10的相互作用。在之前的研究报道中,ANXA2参与了HPV-16和巨细胞病毒的内吞过程,并且可增强病毒感染[13,14]。HPV-16在人角质形成细胞中诱导ANXA2转移到细胞膜外,从而作为受体分子结合HPV-16并介导病毒内吞;在人巨细胞病毒感染过程中,病毒与ANXA2结合并增强了人巨细胞病毒的感染[15]。此外,还有研究发现,在感染HBV后的细胞中,细胞膜上ANXA2水平逐渐下降,可有效防止HBV的过度感染[16]。另有研究观察到ANXA2在人胚横纹肌瘤细胞表面的表达增强了EV71型的感染[17]。
图3ANXA2与DENV-2E蛋白在病毒入胞阶段的共定位分析
图4ANXA2、S100A10与DENV-2E蛋白在细胞内的相互作用
Input组.HA抗体检测ANXA2和S100A10表达情况;IP组.DENV-2E蛋白抗体检测带HA标签的ANXA2和S100A10分别与DENV-2E蛋白的相互作用情况;Vetocr.空载体;α-HA.HA抗体;α-Envelope.DENV-2E蛋白抗体
本研究中,低表达S100A10和ANXA2的细胞中,DENV-2RNA的复制水平降低,提示S100A10和ANXA2对DENV-2的复制周期有显著影响。抗体阻断实验中,以DENV-2E蛋白抗体作为阳性对照、鼠IgG抗体作为阴性对照,ANXA2抗体可显著抑制进入细胞的DENV-2,表明ANXA2在DENV-2入胞阶段参与DENV-2的复制周期,是DENV-2感染起始过程中的重要宿主因子之一。因此,ANXA2在多种病毒包括DENV-2感染细胞的入胞过程中均起到重要的促进作用。除了参与病毒的入胞阶段,ANXA2在HCV致病机制中也起着重要作用,可将病毒NS3/NS4A募集到脂筏微结构域,从而在Huh7.5细胞中启动病毒复制复合物[18]。DENV-2与HCV具有相似的复制机制,ANXA2是否在DENV-2入胞后的复制阶段调控病毒的翻译和转录尚未见报道。此外,ANXA2促进DENV-2入胞是以单体形式还是与S100A10形成四聚体形式发挥功能还须深入研究。
综上所述,我们的研究发现ANXA2可能是DENV-2感染的辅受体之一,通过结合DENV-2E蛋白在DENV-2入胞过程中起到重要作用,为进一步揭示DENV-2入胞的分子机制打下基础,拓展了对DENV-2复制周期的了解,为抗病毒药物靶点的研究提供实验依据。
傅晗,冯哲斌,李硕,叶伟,雷迎峰,张芳琳,徐志凯,董阳超.膜联蛋白A2在登革病毒Ⅱ型入胞过程中作用的初步研究[J].传染病信息,2020,33(03):207-211.
基金:国家自然科学基金青年基金项目(81702003);陕西省重点研发计划一般项目(2020SF-207).
分享:
流行性感冒(以下简称“流感”)是由甲型、乙型或丙型流感病毒引起的急性呼吸道传染病。其中,甲型和乙型流感病毒通常为季节性流行,并常导致局部暴发[1]。相关研究显示,每年全球有300万~500万人感染流感病毒,其中29万~65万人因此死亡[2]。流感的常见临床表现包括发热、咽炎、咳嗽、关节痛和流涕等[2-3]。
2025-08-19移植后EB病毒(Epstein-BarrVirus,EBV)再激活是指患者造血干细胞移植(HematopoieticStemCellTransplantation,HSCT)后机体免疫功能尚未恢复,使潜伏感染的EBV再次激活而产生EBV血症、脑炎、肺炎及移植后淋巴细胞增殖性疾病(PostTransplantLymphoproliferativeDisease,PTLD)等并发症的感染性疾病。
2025-07-08人巨细胞病毒(HCMV)是一种人类普遍易感的病原体,感染后病毒不能被彻底清除,而是以潜伏的形式存在,一般人群初次感染后没有明显症状,婴幼儿极易感染且可导致严重后遗症。B.Popovic等[1]研究指出HCMV感染是婴儿肝炎综合征(IHS)的重要感染病原体,占50%以上,HCMV感染易导致肝脏各种功能遭受破坏。
2025-04-17脊髓灰质炎(poliomyelitis,以下简称脊灰)是由Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型脊灰病毒(Poliovirus,PV)中任意一型引起的急性肠道传染病[1]。在PV感染者中,少数患者可能出现麻痹症状。口服脊灰减毒活疫苗(oralpoliovirusvaccine,OPV)可诱导肠道局部和全身产生保护性免疫应答[2]。
2025-03-14非洲猪瘟 (ASF) 是由非洲猪瘟病毒 (ASFV)引起的一种急性出血性传染病。 ASF 是世界动物卫生组织法定通报的传染病, 于 2018 年首次在中国沈阳出现, 随后迅速席卷全国, 给中国养猪业带来了巨大的经济损失。 根据 B646L 基因序列差异,ASFV 被分为 24 种基因型, 我国主要流行基因Ⅰ型和Ⅱ型。
2025-02-12猫杯状病毒NS2蛋白的截短表达及多克隆抗体的制备与应用生猫科动物[1]。 全基因组有 3 个开放阅读框 ( openreading frames, ORFs), ORF1 (20 ~ 5 311 nt) 编码非结构蛋白, 最终被病毒蛋白酶 (3C 样半胱氨酸蛋白酶) 切割成 7 个非结构蛋白, 包括非结构蛋白 1(NS1)、 非结构蛋白 2 ( NS2)、 膜 核 苷 三 磷 酸 酶(NS3 )、 非 结 构 蛋 白 4 ( NS4 )、 非 结 构 蛋 白 5(NS5)、 非结构蛋白 6 / 7 (NS
2025-02-12腺病毒和流感病毒是两种常见的儿童呼吸道感染疾病,传播方式和治疗方法具有相似性。腺病毒感染通常表现为咽炎、结膜炎和淋巴结肿大等症状,而流感病毒感染则以高热、头痛、肌肉酸痛和全身乏力为主要特征,尽管两者均可通过飞沫传播,但腺病毒的传播途径还包括接触传播(如通过接触被污染的物体表面)。
2025-01-06诺如病毒(Norovirus, NoV)是引起病毒性胃肠炎的主要病原体之一。2012年以来,诺如病毒已成为我国其他感染性腹泻疫情中的优势病原体。诺如病毒传播途径多、感染计量低、传播速度快,极易发展成群体性突发公共卫生事件,尤其是高校、中小学校、托幼机构等人群聚集场所。
2025-01-02HCMV 感染与免疫功能存在密 切关系,当机体免疫处于正常状态时,该病毒可 于体内长期存在,但无明显症状,一旦免疫出现 异常,则可迅速复制,引起机体感染。而儿童群 体免疫功能发育尚不完善,易被 其 感 染 诱 发 肺 炎、脑膜炎、肝炎等多种疾病,且年龄越小易感性 越高,感染后症状也更为严重[3 - 4]。
2024-12-26HIV 载 量 的 测 定 对 HIV 的早期 诊 断、早期诊断及治疗均具重要 意 义[5-7]。 HIV 病毒载量检测每年都在增加,特别是在艾滋病 快速诊断的市场需求下,HIV-1核酸即时检测(mo- lecularpoint-of-careTesting,POCT)问 世,但 仍 需对产品的检测性能进行严格验证以评估其临床应 用。
2024-12-23人气:5015
人气:3702
人气:3524
人气:3310
人气:2713
我要评论
期刊名称:病毒学报
期刊人气:4495
主管单位:中国科学技术协会
主办单位:中国微生物学会
出版地方:北京
专业分类:生物
国际刊号:1000-8721
国内刊号:11-1865/R
邮发代号:82-227
创刊时间:1985年
发行周期:双月刊
期刊开本:大16开
见刊时间:一年半以上
影响因子:1.343
影响因子:1.227
影响因子:1.286
影响因子:0.000
影响因子:1.349
您的论文已提交,我们会尽快联系您,请耐心等待!
你的密码已发送到您的邮箱,请查看!