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淫羊藿总黄酮改善绝经后骨质疏松模型大鼠的作用机制

  2020-10-14    231  上传者:管理员

摘要:目的:基于骨形态发生蛋白(BMP)/Runt相关转录因子2(Runx2)/成骨细胞特异性转录因子(Osx)信号通路研究淫羊藿总黄酮对绝经后骨质疏松(PMOP)模型大鼠的影响,从而明确其防治骨质疏松症(OP)的作用机制。方法:将50只大鼠按体质量分层法随机分为假手术组,模型组,淫羊藿总黄酮低、高剂量组[265、530mg/(kg•d)]和雌二醇组[0.09mg/(kg•d)],每组10只。除假手术组大鼠行假手术外,其余各组大鼠均采用卵巢摘除去势法建立PMOP模型。大鼠造模成功并进行正常饲养2个月后开始灌胃给药,每天给药1次,连续给药84d;假手术组和模型组大鼠灌胃等量生理盐水。末次给药结束后,测定各组大鼠右侧下肢股骨和椎骨的骨密度(BMD)以及股骨骨小梁数量(Tb.N)、骨小梁厚度(Tb.Th)、骨小梁分离度(Tb.Sp);采用酶联免疫吸附法测定大鼠血清中钙离子、骨钙素、Ⅰ型原胶原N端前肽(P1NP)的水平;采用苏木精-伊红染色法观察股骨的病理学变化;分别采用实时荧光定量-聚合酶链式反应法和Westernblotting法检测大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx的mRNA及蛋白的表达水平。结果:与假手术组比较,模型组大鼠股骨、椎骨BMD,血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平,股骨Tb.N和Tb.Th以及股骨组织中BMP、Runx2、OsxmRNA及蛋白表达水平均显著降低(P<0.01),股骨Tb.Sp显著升高(P<0.01);骨小梁组织结构紊乱,断裂明显。与模型组比较,各给药组大鼠上述指标均显著改善(P<0.05或P<0.01),并且淫羊藿总黄酮的作用具有剂量依赖性(P<0.05);骨小梁数目增多,排列整齐,结构较为完整。结论:淫羊藿总黄酮改善OP的作用机制可能与促进BMP/Runx2/Osx信号通路活性有关。

  • 关键词:
  • Runt相关转录因子2
  • 临床药学
  • 大鼠
  • 成骨细胞特异性转录因子
  • 淫羊藿总黄酮
  • 骨小梁数目
  • 骨形态发生蛋白
  • 骨质疏松症
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骨质疏松症(OP)是以骨量低下、骨组织微结构损坏,导致骨脆性增加、易发生骨折为特征的全身性骨病。随着我国人口的老龄化,OP患病率逐年增加,最新调查显示,我国40岁以上人群的OP发病率高达24.62%[1],其中绝经后骨质疏松症(PMOP)占比最大[2]。目前,西医治疗OP的基础用药有钙剂、维生素D以及雌激素等[2],但长期使用副作用较多[3,4]。

中医药在防治OP上具有独特优势,但其多成分、多靶点的作用机制复杂,尚未完全阐明。淫羊藿具有补肾、健骨等功效,临床常用于治疗肾虚、筋骨萎软等症[5]。现有研究已明确,淫羊藿抗OP的主要有效成分是以淫羊藿苷为代表的黄酮类化合物[6],其中淫羊藿总黄酮可促进骨髓间充质干细胞(BMSCs)的成骨性分化[7],并具有促进骨形成和抑制骨吸收的双重活性[8,9],但其信号转导机制尚未明确。

相关研究显示,由骨形态发生蛋白(BMP)、Runt相关转录因子2(Runx2)、成骨细胞特异性转录因子(Osx)组成的BMP/RunX2/Osx信号通路与骨形成密切相关[10,11,12],基于对淫羊藿的相关药理机制的研究[13],笔者推测淫羊藿总黄酮可能是通过BMP/Runx2/Osx通路防治OP。本研究通过建立PMOP大鼠模型,探索淫羊藿总黄酮对其骨组织学和BMP/Runx2/Osx信号通路的影响,从而明确淫羊藿总黄酮防治OP的作用机制。


1、材料


1.1仪器

MK3型酶标仪(美国Bio-Rad公司);ZF-208型凝胶成像系统(上海恒勤仪器设备有限公司);PIDRed96型聚合酶链式反应(PCR)仪(美国ThermoFisherScientific公司);RM2245型冰冻切片机(北京世贸远东科学仪器有限公司);EG1150型包埋机、SM2000R石蜡滑动式切片机(德国Leica公司);BX-2型光学显微镜(日本Olympus公司);AllegraX-15R型医用离心机(美国Beckman公司);DexaPro-1型双能X射线骨密度仪(美国GE公司);JS-Power300型电泳仪(上海迪奥生物科技有限公司);SkyScan1272型超高分辨率microCT系统(比利时Bruker公司)。

1.2药品与试剂

淫羊藿总黄酮(江苏康缘阳光药业有限公司,批号:20198954,纯度:>90%);戊酸雌二醇片(廊坊高博京邦制药有限公司,批号:20191125,规格:2mg/片);血清钙离子、骨钙素、Ⅰ型原胶原N端前肽(P1NP)酶联免疫吸附(ELISA)检测试剂盒(北京百奥莱博科技有限公司,批号:ZN2797349、ZN27840113、ZN27528941);十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝胶试剂盒(批号:ED2036r)、羊抗鼠BMP多克隆抗体(批号:jx-2350)、羊抗鼠Runx2多克隆抗体(批号:jx-2056)、羊抗鼠Osx多克隆抗体(批号:jx-2752)、羊抗鼠甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)多克隆抗体(批号:jx-1379)、辣根过氧化物酶(HRP)标记羊抗鼠免疫球蛋白G(IgG)二抗(批号:jx-1943)、二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量试剂盒(批号:ED2582r)、实时荧光定量-PCR试剂盒(批号:ED37945r)均购自广州晶欣生物科技有限公司;苏木精、伊红染液(武汉科诺生物科技有限公司);其余试剂均为分析纯或实验室常用试剂,水为蒸馏水。

1.3动物

50只健康成年SD大鼠,SPF级,雌性,6月龄,体质量为170~210g,由广州中医药大学实验动物中心提供[实验动物生产合格证号:SCXK(粤)2018-0034]。饲养环境温度为(22±2)℃、相对湿度为50%。本研究通过广州中医药大学动物实验中心伦理委员会批准。


2、方法


2.1分组、造模与给药

选取50只SD大鼠,适应性喂养1周后,按体质量分层法随机分为5组:假手术组,模型组,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组,每组10只。除假手术组外,其余4组大鼠均采用卵巢摘除去势法建立PMOP模型[14],具体操作为:用10%水合氯醛将大鼠麻醉后,在其腰椎棘突旁开1cm处,沿着皮肤和肌肉纵向剖离1.5cm左右的深度,在脂肪团中找到双侧卵巢并切除双侧卵巢;假手术组大鼠采用同样的手术操作暴露卵巢,但不摘除。术后腹腔注射青霉素(10万单位/d),连续3d。术后大鼠正常饲养,2个月后开始灌胃给药,每天给药1次,连续给药84d(12周)。其中,淫羊藿总黄酮低、高剂量组大鼠的给药剂量分别为265、530mg/(kg·d)[分别为成人(体质量以50kg计)临床用量的1、2倍等效剂量],雌二醇组大鼠的给药剂量为0.09mg/kg[15],假手术组和模型组大鼠均灌胃等量生理盐水,给药体积均为1mL/100g。

2.2大鼠股骨、椎骨骨密度(BMD)和股骨微结构检测

末次给药结束后24h,各组大鼠腹腔注射10%水合氯醛麻醉,将其右股骨、椎骨部位置于双能X线密度仪上检测BMD。将各组大鼠完整的股骨置于microCT系统上进行扫描,扫描完成后,通过EvaluationV6.5.3软件建模采集图像并对股骨微结构进行分析,采集骨小梁数量(Tb.N)、骨小梁厚度(Tb.Th)、骨小梁分离度(Tb.Sp)等数据。

2.3大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平检测

采用ELISA法进行检测。末次给药后1h从大鼠的腹主动脉取血5mL,放置1h后,以3000r/min离心10min,分离上层血清。分别按照ELISA试剂盒说明书操作,检测血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平。

2.4大鼠股骨组织的病理学观察

采用苏木精-伊红(HE)染色法进行观察。取血后,将各组大鼠处死,取其左侧股骨,以10%甲醛固定,再用20%EDTA脱钙液进行脱钙,然后进行脱水(60min);用二甲苯Ⅰ和Ⅱ进行透明(分别处理60min),常规浸蜡、包埋后进行组织切片(4µm)。行HE染色后,在光学显微镜下观察股骨的病理学变化。

2.5大鼠骨组织中BMP、Runx2、OsxmRNA表达情况检测

采用实时荧光定量-PCR法进行检测。取大鼠右侧股骨洗净,取部分骨片(另一部分保存于-80℃)。采用Trizol法提取其总RNA,确定其纯度和浓度后,将总RNA反转录合成cDNA,并以cDNA为模板进行PCR扩增。反应体系(共20µL):SYBR荧光染料10μL,上、下游引物各2μL,cDNA模板4μL,无核酸酶水2μL。反应条件:94℃预变性5min;95℃变性30s,60℃退火30s,72℃延伸1min,共40个循环。以GAPDH作为内参,采用2-ΔΔCt法计算各目标基因mRNA的表达水平(式中Ct表示荧光信号强度达到设定阈值时经历的循环次数)。引物由武汉擎科生物公司设计并提供,其引物序列及产物大小见表1。

表1引物序列及产物大小

2.6大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白表达情况检测

采用Westernblotting法进行检测。取冷冻保存的大鼠右股骨组织,每组随机取3个样本,用无菌眼科剪刀将其尽可能剪碎,置于研钵内研磨,加入裂解液使其充分裂解。裂解完毕后,以12000r/min离心15min,取上清液,用BCA蛋白检测试剂盒测定蛋白浓度。蛋白经变性后,取50µg进行SDS-PAGE电泳(140V),然后在300mA下转膜1h至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上;TBST缓冲液洗膜5min×3次;将膜放入5%的脱脂奶粉中,室温条件下封闭孵育2h;将膜取出后,用TBST缓冲液洗膜5min×3次;分别加入BMP、Runx2和Osx一抗(稀释度均为1∶1000),4℃孵育过夜;加入二抗(稀释度为1∶200),室温孵育1h;以ECL试剂盒显色后,置于凝胶成像系统上成像。采用ImageJv1.5.1软件进行分析,以目标蛋白条带灰度值与内参蛋白(GAPDH)条带灰度值的比值表示目标蛋白的表达水平。

2.7统计学方法

采用SPSS22.0统计学软件对数据进行统计分析。符合正态分布的计量资料以表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验;若不符合正态分布,则采用非参数检验进行组间比较。P<0.05表示差异具有统计学意义。


3、结果


3.1淫羊藿总黄酮对PMOP模型大鼠股骨、椎骨BMD的影响

与假手术组比较,模型组大鼠股骨、椎骨BMD显著降低(P<0.01);与模型组比较,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组大鼠股骨、椎骨BMD均显著升高(P<0.05或P<0.01);与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组和雌二醇组大鼠股骨BMD显著升高(P<0.05);与雌二醇组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组大鼠股骨、椎骨BMD差异均无统计学意义(P>0.05)。各组大鼠股骨、椎骨BMD测定结果见表2。

表2各组大鼠股骨、椎骨BMD测定结果

注:与假手术组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,ΔP<0.05

3.2淫羊藿总黄酮对PMOP模型大鼠股骨微结构的影响

与假手术组比较,模型组大鼠股骨Tb.N、Tb.Th显著降低(P<0.01),Tb.Sp显著升高(P<0.01);与模型组比较,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组大鼠股骨Tb.N、Tb.Th显著升高(P<0.05或P<0.01),Tb.Sp显著降低(P<0.05或P<0.01);与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组和雌二醇组大鼠股骨Tb.N、Tb.Th显著升高(P<0.05),Tb.Sp显著降低(P<0.05);与雌二醇组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组大鼠股骨Tb.N、Tb.Th显著升高(P<0.05),Tb.Sp差异无统计学意义(P>0.05)。各组大鼠股骨微结构microCT扫描图见图1,Tb.N、Tb.Th、Tb.Sp测定结果见表3。

3.3淫羊藿总黄酮对PMOP模型大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平的影响

与假手术组比较,模型组大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平显著降低(P<0.01);与模型组比较,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平均显著升高(P<0.05或P<0.01);与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组和雌二醇组大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平均显著升高(P<0.05);与雌二醇组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组大鼠血清中P1NP水平显著升高(P<0.05),血清中钙离子、骨钙素水平差异无统计学意义(P>0.05)。各组大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平测定结果见表4。

图1各组大鼠股骨骨微结构microCT扫描图(三维重建图像,×100)

表3各组大鼠股骨Tb.N、Tb.Th、Tb.Sp测定结果

注:与假手术组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,ΔP<0.05;与雌二醇组比较,★P<0.05

3.4淫羊藿总黄酮对PMOP模型大鼠股骨组织病理学的影响

与假手术组比较,模型组大鼠骨小梁组织结构紊乱,断裂明显,骨髓腔内部空洞较多;与模型组比较,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组大鼠骨小梁数目增多、排列整齐,结构较为完整,其中以淫羊藿总黄酮高剂量组和雌二醇组改善较为明显。各组大鼠股骨组织病理学观察显微图见图2。

表4各组大鼠血清中钙离子、骨钙素、P1NP水平测定结果

注:与假手术组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,ΔP<0.05;与雌二醇组比较,★P<0.05

图2各组大鼠股骨组织病理学观察显微图(HE染色,×40)

3.5淫羊藿总黄酮对PMOP大鼠骨组织中BMP、Runx2、OsxmRNA表达的影响

与假手术组比较,模型组大鼠骨组织中BMP、Runx2、OsxmRNA的表达水平显著降低(P<0.01);与模型组比较,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组大鼠骨组织BMP、Runx2、OsxmRNA表达水平均显著降低(P<0.05或P<0.01);与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组和雌二醇组大鼠骨组织中BMP、Runx2、OsxmRNA表达水平均显著升高(P<0.05);与雌二醇组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组大鼠骨组织中Runx2、OsxmRNA表达水平均显著升高(P<0.05),但BMPmRNA表达水平差异无统计学意义(P>0.05)。各组大鼠骨组织BMP、Runx2、OsxmRNA的表达水平测定结果见表5。

表5各组大鼠骨组织BMP、Runx2、OsxmRNA表达水平测定结果

注:与假手术组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,ΔP<0.05;与雌二醇组比较,★P<0.05

3.6淫羊藿总黄酮对PMOP模型大鼠骨组织BMP、Runx2和Osx蛋白表达的影响

与假手术组比较,模型组大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白表达水平均显著降低(P<0.01);与模型组比较,淫羊藿总黄酮低、高剂量组和雌二醇组大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白表达水平显著升高(P<0.05或P<0.01);与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组和雌二醇组大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白的表达水平均上升(P<0.05);与雌二醇组比较,淫羊藿总黄酮高剂量组骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白表达水平差异均无统计学意义(P>0.05)。各组大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx的蛋白表达电泳图见图3,蛋白表达水平测定结果见表6。


4、讨论


中医虽无OP的直接记载,但据OP的病因病机及临床症状可知,其与中医学的“骨痹”“骨痿”非常相似[16]。根据中医“肾主骨”的理论,肾精盛衰是诱发OP的重要因素[17],故中医治疗多以补肾益精为主。西医治疗OP的方式主要包括给予雌二醇等骨吸收抑制剂[2],故本研究以其为阳性药对照。淫羊藿总黄酮是补肾中药淫羊藿中的一种有效成分,以其为主要成分的制剂(如淫羊藿总黄酮胶囊)在临床上已用于OP的治疗。虽然有研究表明,淫羊藿总黄酮可以促进BMSCs的表达以及骨愈合和骨吸收[18],但是具体相关药理机制尚未明确。

图3各组大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白表达的电泳图

表6各组大鼠骨组织中BMP、Runx2、Osx蛋白表达水平测定结果

注:与假手术组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与淫羊藿总黄酮低剂量组比较,ΔP<0.05

BMP/Runx2/Osx信号通路与骨形成密切相关,参与调控成骨细胞的分化[19,20]。BMPs属于转化生长因子(TGF-β)超家族,可诱导BMSCs向成软骨细胞、成骨细胞等分化,促进成骨细胞功能。其中,BMP能通过与细胞膜表面的异二聚体受体特异性结合,调节Runx2及其下游Osx基因的转录和表达[21]。作为特异性成骨细胞转录因子和成骨细胞分化的关键调节因子,Runx2通过结合成骨细胞特异性顺式作用元件(OSE),激活骨桥素、骨钙蛋白、骨涎蛋白和Ⅰ型胶原基因等多种成骨细胞增殖、分化特异性标志物的转录和表达,促进膜内和软骨内骨化成骨[22]。而Osx属于锌指蛋白,是Runx2的下游关键性转录因子,通过调控许多成骨细胞重要晚期表型和功能蛋白的表达,促进BMSCs的成骨转化[23,24,25,26]。而在骨组织构建过程中,骨质的形成和吸收是同时发生的,骨构建过程处于失衡状态时,骨吸收显著高于骨形成,进而导致OP[27]。有细胞试验证实,BMP/Runx2/Osx信号通路参与了淫羊藿总黄酮促BMSCs定向成骨分化的进程,淫羊藿总黄酮能明显上调BMP-2的转录和表达[10]。

本研究结果显示,淫羊藿总黄酮可以升高PMOP模型大鼠股骨BMD、血清钙离子,股骨Tb.N和Tb.Th,降低股骨Tb.Sp,增多且增宽骨小梁,上调骨组织中BMP、Runx2、Osx的mRNA及其蛋白的表达。以上结果提示,淫羊藿总黄酮可以通过对BMP/Runx2/Osx信号通路的调控,从而升高骨骼BMD,增加骨形成,减少钙丢失以及改善骨小梁形态排列,从而降低或延缓OP的发生发展。

综上所述,淫羊藿总黄酮可通过上调股骨中BMP、Runx2、Osx的mRNA和蛋白表达,增加BMD和骨小梁的数量,改善股骨微结构,提高血清中钙离子、骨钙、P1NP的水平,从而修复骨构建失衡,起到防治OP的作用。但由于中药对机体或者细胞具有多途径、多靶点作用的特点,BMP/Runx2/Osx信号通路未必是淫羊藿总黄酮防治OP的唯一途径,此过程中还可能有其他信号转导通路的参与,故其具体的分子机制仍需进一步深入研究。


参考文献:

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基金:国家自然科学基金资助项目(No.8177151024).

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