摘要:目的 利用逆转录-重组酶介导等温扩增技术(reverse transcription recombinase-aided isothermal amplification,RT-RAA)建立一种甲型流感病毒(Influenza A virus)的快速检测方法。方法 首先在美国国家生物技术信息中心NCBI上检索甲型流感病毒的基因序列,利用DNAstar软件进行序列对比,针对保守M基因设计3对引物及1条荧光探针,建立甲型流感病毒荧光RT-RAA检测方法,并对建立的方法进行特异性、灵敏性、重复性试验以及临床样本的检测。结果 成功筛选出1对扩增效果好的引物及探针,建立了快速检测甲型流病毒感的荧光RT-RAA方法。该方法在42℃条件下恒温扩增20 min就能完成检测,最低可检测到3.18×10~0拷贝/μl甲型流感病毒重组质粒,与乙型流感病毒、新冠病毒、登革病毒均无交叉反应。用商品化试剂盒与本研究建立的荧光RT-RAA方法检测20份甲型流感病毒核酸阳性临床样本,两种方法的符合率为100%。结论 成功建立了快速检测甲型流感病毒的荧光RT-RAA方法,具有较好的特异性、灵敏性,为甲型流感病毒检测提供了新方法。
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甲型流感病毒(Influenza A virus)是医学上一种重要的病毒,目前仍在全球各个地区造成重大死亡和发病率[1]。甲型流感病毒属于正黏病毒科的负链RNA病毒[2],基因组分为8个节段(PB2、PB1、PA、HA、NP、NA、M、NS),编码11个病毒蛋白[3]。根据血凝素(HA)和神经氨酸酶(NA)这两种表面糖蛋白将其分为多种亚型,目前,全世界已确定16种HA和9种NA亚型[4],所有HA和NA亚型均已从野生鸟类中分离出来,人类和其他哺乳动物的感染仅限于少数亚型[5]。甲型流感病毒的宿主范围广泛,猪、猫、鲸、禽类以及人体均可检出[6],是一种危害极大的人畜共患呼吸道病毒,建立快速检测方法对防控尤为重要。
甲型流感病毒的诊断方法主要有病毒分离培养、免疫荧光法、流式细胞仪法、实时荧光聚合酶链反应(Real-time polymerase chain reaction,RT-PCR)等[7],重组酶介导等温扩增技术(recombinase-aided isothermal amplifification,RAA)是一种新型等温扩增技术,不需要复杂的温度设置,在37~42℃恒温条件下就能扩增[8],相较于其他检测技术,具有操作方法简单、灵敏度高、扩增时间短等优点[9-10]。
本研究利用逆转录-重组酶介导等温扩增技术(reverse transcription recombinase-aided isothermal amplification,RT-RAA)建立了通用型甲型流感病毒的快速检测方法,可在20 min内完成检测,有效缩短检测时间,可检测甲型流感病毒的所有亚型,为甲型流感病毒的检测提供了一种新方法。
1、材料与方法
1.1毒株和样本
甲型流感病毒、乙型流感病毒(Influenza B virus)、新型冠状病毒(SARS-CoV-2)、登革病毒(Dengue virus,DENV)核酸、20份甲型流感病毒核酸由青岛国际旅行卫生保健中心实验室保存。
1.2引物及荧光探针设计
在NCBI (www.ncbi.nlm.nih.gov)检索甲型流感病毒基因序列,用DNAstar软件进行序列比对,选择较保守的M基因设计引物和荧光探针,并利用Primer-BLAST软件(www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer?blast/)验证引物序列特异性。引物和探针均由生工生物工程(上海)有限公司合成。具体信息见表1。
表1本研究设计的甲型流感病毒引物和荧光探针序列
1.3重组质粒的制备
将扩增的目的基因片段克隆至pUC57载体,制备重组质粒,计算拷贝数(拷贝/μl)=[6.02×1023×质量浓度(mg/L)×10-9]/(片段长度×660)。重组质粒由生工生物工程(上海)有限公司合成。
1.4 R T-R AA反应体系及反应条件
根据RT-RAA核酸扩增试剂盒(荧光型,杭州众测生物科技有限公司)说明书配制反应体系,其中(10μmol/L)引物共4μl、(10μmol/L)探针0.6μl、模板5μl,加到反应干粉中吹打混匀,上机检测。反应条件为:42℃40 s;42℃30 s,40个循环。
1.5特异性试验
利用乙型流感病毒、SARS-CoV-2、DENV的核酸验证本研究建立方法的特异性,去离子水为阴性对照。
1.6灵敏性试验
计算出重组质粒浓度为3.18×109拷贝/μl,10倍梯度稀释。用3.18×105~3.18×100拷贝/μl的重组质粒进行灵敏性试验,去离子水为阴性对照。
1.7重复性试验
用3.18×105拷贝/μl的重组质粒重复检测4次,去离子水为阴性对照,评价方法的重复性。
1.8临床样品的检测
应用上海之江生物科技有限公司生产的甲、乙型流感病毒联合测定试剂盒(荧光PCR法)与本研究建立的荧光RT-RAA方法分别检测20份甲型流感病毒临床样本核酸,比较两种方法的一致性。
2、结果
2.1引物和探针筛选
将设计的3对引物和1条荧光探针进行组合,扩增3.18×105拷贝/μl的重组质粒。3对引物和探针组合均出现明显扩增曲线,其中引物FLU A-F1/R1出峰时间最早,引物FLU A-F2/R2荧光信号最强(图1)。确定出峰时间较早、荧光信号最强的引物FLU A-F2/R2进行后续试验。
图1甲型流感病毒荧光RT-RAA的引物筛选
注:1.引物FLU A-F1/R1;2.引物FLU A--F2/R2;3.引物FLU A-F3/R3;4.阴性对照。
2.2特异性试验
用本研究建立的荧光RT-RAA方法检测重组质粒、乙型流感病毒、SARS-CoV-2、DENV核酸。结果如图2所示,除甲型流感病毒重组质粒外其他病毒均未出现扩增曲线,表明建立的方法具有良好的特异性。
图2甲型流感病毒荧光RT-RAA方法的特异性验证
2.3灵敏性试验
以浓度为3.18×105~3.18×100拷贝/μl的重组质粒为模板进行灵敏性试验。结果如图3所示,建立的荧光RT-RAA方法最低检出浓度为3.18×100拷贝/μl的甲型流感病毒重组质粒,具有较好的灵敏性。
图3甲型流感病毒荧光RT-RAA检法的灵敏性验证
2.4重复性试验
用3.18×105拷贝/μl的甲型流感病毒重组质粒为模板进行4次组内的重复性试验,结果如图4所示。重组质粒均出现扩增曲线,且起峰时间和最高峰值都差异较小,表明具有较好的重复性。
图4甲型流感病毒荧光RT-RAA方法的重复性验证
2.5临床样本检测
分别用本研究建立的荧光RT-RAA方法与商品化试剂盒检测20份甲型流感病毒核酸,两种方法均检出20份阳性,符合率100%。但荧光RT-RAA方法比商品化试剂盒检测时间更短,在20 min内完成检测,和商品化试剂盒所需75 min相比,大大提高了检测效率,并且操作更加简便。
3、讨论
甲型流感病毒不仅能感染动物,导致宿主动物死亡,还能够感染人类,在人群中流行,甚至可引起流感大流行[11]。常用的检测方法主要是胶体金免疫层析和实时荧光定量RT-PCR法[12],胶体金法简便快速,但敏感性较低,可能漏检;某些特殊类型流感病毒变异株无法检测出来[13]。实时荧光定量RT-PCR灵敏度高且能区分不同亚型,但需要扩增仪和专业技术人员,且扩增时间较长,不适用于资源有限的基层。
RAA作为一种快速检测技术,其原理主要是利用重组酶、单链DNA型结合蛋白(SSB)和引物形成复合体后对双链DNA扫描;识别同源序列并插入DNA使其解旋;SSB单链结合DNA防止复性,之后在dNTPs和ATP存在情况下,由DNA聚合酶完成链的延伸[14]。和荧光定量PCR相比,RT-RAA不需要升温降温的过程,只需42℃20 min即可完成检测,缩短了检测时间,对于疫情的防控和诊断有着重要意义。
本研究应用荧光RT-RAA技术成功建立甲型流感病毒快速检测方法,检测时间短、设备依赖性小、操作简便,与乙型流感病毒、SARS-CoV-2、DENV无交叉反应,具有良好的特异性,最低可检测到3.18×100拷贝/μl的甲型流感病毒重组质粒,拥有较好的重复性,为甲型流感病毒的检测提供了新方法,具有较好的应用前景。
参考文献:
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基金资助:山东省重点研发计划项目(2021CXGC011306);
文章来源:杨森,李桂梅,滕新栋.甲型流感病毒荧光RT-RAA检测方法的建立[J].中国国境卫生检疫杂志,2024,47(06):555-558.
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期刊名称:中国国境卫生检疫杂志
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主管单位:国家质量监督检验检疫总局
主办单位:中国检验检疫科学研究院
出版地方:北京
专业分类:医学
国际刊号:1004-9770
国内刊号:11-3254/R
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