摘要:目的探讨琥珀酸脱氢酶抑制剂对内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸代谢和炎性损伤的影响。方法SPF级健康雄性SD大鼠40只,体质量200~220g,采用随机数字表法,将大鼠随机分为4组(n=10):正常对照组(C组)、琥珀酸脱氢酶抑制剂(丙二酸二甲酯)对照组(DC组)、内毒素血症组(E组)和抑制剂+内毒素血症组(DE组)。E组和DE组腹腔注射脂多糖20mg/kg建立内毒素血症模型,C组和DC组给予等容量生理盐水。LPS处理4h后,DC组和DE组大鼠腹腔注射琥珀酸脱氢酶抑制剂160mg/kg,C组和E组给予等容量生理盐水。采用ELISA检测血清肌钙蛋白I(cTnI)浓度以及心肌组织肿瘤坏死因子-α(tumornecrosisfactor-α,TNF-α)和白介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)的含量。采用琥珀酸含量检测试剂盒检测心肌组织内琥珀酸的含量。采用Westernblot法和免疫荧光法检测琥珀酸脱氢酶的表达。采用Westernblot检测心肌组织核因子κB抑制蛋白-α(inhibitorofNF-κB,IκB-α)磷酸化程度和缺氧诱导因子-1α(hypoxiainduciblefactor-1α,HIF-1α)的表达。结果与C组比较,E组和DE组大鼠血清cTnI浓度、心肌组织琥珀酸、琥珀酸脱氢酶、IκB-α磷酸化程度、HIF-α、TNF-α和IL-1β水平显著升高(P<0.05)。与E组比较,DE组大鼠血清cTnI浓度及心肌组织琥珀酸、IκB-α磷酸化程度、HIF-α、TNF-α和IL-1β水平显著降低(P<0.05)。结论内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸和琥珀酸脱氢酶含量显著升高,抑制琥珀酸脱氢酶活性可有效降低琥珀酸的堆积,进而可能通过抑制NF-κB和HIF-1α通路降低心肌组织内炎性细胞因子的产生。
加入收藏
脓毒血症时,内毒素进入体内导致全身炎症反应综合征,进一步造成重要脏器功能障碍。内毒素导致的心脏功能障碍表现为心脏收缩功能障碍和心肌顺应性降低。内毒素导致的心肌损伤由多种相互影响的因素导致,包括炎性损伤、氧自由基损伤、能量代谢障碍和心肌细胞凋亡或者坏死[1]。能量代谢障碍是内毒素导致心肌受损的重要机制。
琥珀酸是三羧酸循环中关键的中间产物。生理条件下,线粒体内琥珀酸脱氢酶将琥珀酸氧化为延胡索酸,同时释放电子参与氧化磷酸化[2]。内毒素可使巨噬细胞内琥珀酸含量增加,堆积的琥珀酸可作为信号传导因子促进巨噬细胞炎性因子释放并且抑制抗炎细胞因子的合成[3]。另外,缺血心肌细胞内也存在琥珀酸大量堆积,是心肌缺血再灌注损伤的重要机制[2,4,5]。由于琥珀酸的堆积与SDH活性的改变密切相关,本研究采用LPS处理大鼠建立脓毒血症心肌损伤模型,探讨琥珀酸和SDH在心肌组织中的变化和对心肌炎性损伤的影响。
1、材料与方法
1.1动物选择和试剂
SPF级健康雄性SD大鼠40只,2~3月龄,体质量200~220g,由重庆医科大学实验动物中心提供。脂多糖(055:B5)、SDH抑制剂丙二酸二甲酯和琥珀酸检测试剂盒购自美国Sigma-Aldrich公司。SDH抗体(SDH-a抗体)购于美国Abcam公司。核因子κB抑制蛋白-α(inhibitorofNF-κB,IκB-α)抗体和磷酸化IkB-α抗体购自美国CST公司。缺氧诱导因子-1α抗体、辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG二抗、FITC标记荧光二抗和2,6-二异丙基苯胺购自武汉博士德生物工程有限公司。大鼠肌钙蛋白I(cTnI)、肿瘤坏死因子-α和白介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)酶联免疫(ELISA)检测试剂盒购自美国R&D公司。
1.2分组和药物处理
采用随机数字表法将大鼠分为40组(n=8):生理盐水处理组(C组)、琥珀酸脱氢酶抑制剂DMM+生理盐水处理组(DC组)、LPS处理组(E组)和DMM+LPS处理组(DE组)。E组和DE组腹腔注射LPS20mg/kg,建立大鼠内毒素血症模型,C组和DC组给予等容量生理盐水。在给予大鼠LPS4h后,DC组和DE组给予腹腔注射DMM160mg/kg,C组和E组给予等量生理盐水。DMM处理4h后(即LPS处理8h后)收集标本做进一步检测。
1.3检测指标及方法
1.3.1标本的采集及制备
LPS处理大鼠8h后,腹腔注射戊巴比妥钠(45mg/kg)麻醉起效后,剪开大鼠腹部,采集腹主动脉血样2mL,低温离心10min(3500×g,4℃,离心半径12cm),取上清液,-70℃保存,用于测定血清cTnI含量。剖开胸腔,迅速摘取心脏,置于PBS液中清洗3次。冰浴下剪碎心脏,RIPA裂解液裂解,研磨匀浆,低温离心10min(12000×g,4℃,离心半径10cm)。提取上清液,用于WesternBlot检测心肌组织内相关蛋白表达和ELISA检测心肌组织内TNF-α和IL-1β含量。
1.3.2心肌组织内琥珀酸含量的检测
实验结束后,麻醉大鼠后立即打开胸腔,取出心脏并于PBS液中清洗3次后,将心脏放入液氮速冻(2min左右完成)。液氮条件下将心肌组织研磨成粉,取10mg组织粉末加入100μL琥珀酸检测缓冲液在4℃条件下迅速匀浆,低温离心5min(10000×g,4℃,离心半径10cm)后取上清液待测。采用琥珀酸检测试剂盒并按照说明书操作流程检测心肌组织内琥珀酸含量。
1.3.3免疫荧光法检测心肌组织内SDH的表达
实验完成后,腹腔注射戊巴比妥钠(45mg/kg)麻醉大鼠,摘取心脏,取心室肌组织部分PBS清洗,4%多聚甲醛固定,脱水,石蜡包埋,切片,烤片。此后二甲苯脱蜡,不同梯度乙醇浸泡复水,双蒸水清洗3次,每次2min。将切片放于盛有枸橼酸盐缓冲液的溶液中,置于微波炉内加热(95℃)10min。室温冷却15min,PBS清洗。蒸馏水清洗,PBS浸泡5min。在切片组织上滴加正常山羊血清,室温封闭60min。吸水纸吸掉封闭液,再在每张切片组织上滴加足够量的兔抗大鼠SDH-a抗体(比例为1∶200)并放入湿盒,4℃孵育过夜。阴性对照用PBS液代替一抗。取出湿盒,室温复温30min,PBS浸洗切片3次,每次3min。吸水纸吸干切片组织上多余液体后滴加稀释好的FITC荧光二抗(比例为1∶800),湿盒中37℃孵育60min。PBS清洗3次,每次3min。滴加DAPI避光孵育15min。PBS清洗4次,每次5min。用含有抗荧光淬灭剂的封片液封片,然后在激光扫描共聚焦显微镜下观察采集图像。
1.3.4Westernblot法检测心肌组织内SDH、HIF-1α、IκB-α和磷酸化IκB-α的表达量
心肌组织检测标本制备同前。蛋白浓度采用BCA蛋白浓度检测试剂盒测定。取蛋白样本50μg,上样于SDS-PAGE电泳凝胶,并在80V下电泳。将凝胶中的目标蛋白电转于PVDF膜上。在含5%脱脂奶粉的TBST液中封闭2h后,将兔抗大鼠抗SDH-a、HIF-1α、IκB-α和磷酸化IκB-α抗体(稀释度均为1∶1000)孵于膜上,4℃过夜。PBS洗涤3次,将辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG孵于膜上,并在37℃环境中孵育2h。PBS洗涤3次,使用ECL-plus显色剂在Bio-Rad显色仪中显色。采用QuentityOne软件测定条带灰度值,以目的蛋白条带灰度值与内参β-actin灰度值的比值反映目的蛋白表达水平。
1.3.5血清cTnI及心肌组织TNF-α和IL-1β含量的检测
采用大鼠cTnI、TNF-α和IL-1β酶联免疫(ELISA)检测试剂盒检测血清cTnI浓度及心肌组织TNF-α和IL-1β的含量。按照ELISA试剂盒说明书进行操作。
1.4统计学处理
采用SPSS17.0统计学软件进行分析,计量资料以x¯±s表示,组间比较采用单因素方差分析,采用Tukeytest进行进一步比较。P<0.05为差异有统计学意义。
2、结果
2.1SDH抑制剂DMM对内毒素血症大鼠血清cTnI浓度的影响
C组和DC组大鼠血清cTnI浓度无明显差异(P>0.05)。与对照组(C组)比较,LPS处理大鼠8h后,E组和DE组血清cTnI浓度显著升高(C组与E组、DE组比较,P<0.05)。DMM处理内毒素血症大鼠4h后,血清cTnI浓度显著降低(DE组与E组比较,P<0.05)。如图1。
图1SDH抑制剂DMM对内毒素血症大鼠血清cTnI含量的影响
C:生理盐水处理组;DC:SDH抑制剂DMM+生理盐水处理组;E:LPS处理组;DE:SDH抑制剂DMM+LPS处理组a:P<0.05,与C组比较;b:P<0.05,与E组比较
2.2DMM对内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸含量的影响
C组和DC组大鼠心肌组织内琥珀酸含量无明显差异(P>0.05)。与C组比较,E组和DE组心肌组织内琥珀酸含量显著升高,差异有统计学意义(P<0.05)。与E组比较,DE组心肌组织内琥珀酸含量显著降低(P<0.05),说明SDH抑制剂DMM能有效抑制内毒素血症大鼠心肌组织内的琥珀酸含量增加,如图2。
图2DMM对内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸含量的影响
C:生理盐水处理组;DC:SDH抑制剂DMM+生理盐水处理组;E:LPS处理组;DE:SDH抑制剂DMM+LPS处理组a:P<0.05,与C组比较;b:P<0.05,与E组比较
2.3各组大鼠心肌组织SDH表达量的比较
C组和DC组大鼠心肌组织内SDH表达量无明显差异。与C组比较,E组和DE组心肌组织内SDH表达水平显著升高(P<0.05)。E组和DE组大鼠心肌组织内SDH表达量无明显差异(P>0.05)。该结果表明LPS处理可显著提高大鼠心肌组织内SDH表达量,而DMM对大鼠体内琥珀酸脱氢酶表达量无明显影响,如图3。
2.4DMM对内毒素血症大鼠心肌组织内IκB-α磷酸化程度和HIF-1α表达量的影响
C组和DC组大鼠心肌组织内IκB-α磷酸化程度和HIF-1α表达量无明显差异(P>0.05)。与C组比较,E组和DE组心肌组织内IκB-α磷酸化程度和HIF-1α表达量显著升高(P<0.05),提示LPS处理明显激活大鼠心肌组织的炎性反应。与E组比较,DE组心肌组织内p-IκB-α和HIF-1α的表达量显著降低(P<0.05),提示DMM有效抑制内毒素血症大鼠心肌组织炎性反应通路,如图4。
图3各组大鼠心肌组织琥珀酸脱氢酶表达量的比较
C:生理盐水处理组;DC:SDH抑制剂DMM+生理盐水处理组;E:LPS处理组;DE:SDH抑制剂DMM+LPS处理组;a:P<0.05,与C组比较A:免疫荧光检测心肌组织内SDH的表达(×400倍);B:采用imageJ软件分析各组心肌组织SDH荧光强度并比较;C:WesternBlot检测各组心肌组织内SDH表达所获得的免疫条带;D:各组心肌组织内SDH的相对表达量(即SDH免疫条带与β-actin免疫条带的灰度值之比)
图4DMM对内毒素血症大鼠心肌组织内IκB-α磷酸化程度和HIF-1α表达量的影响
C组:生理盐水处理组;DC组:SDH抑制剂DMM+生理盐水处理组;E组:LPS处理组;DE组:SDH抑制剂DMM+LPS处理组;a:P<0.05,与C组比较;b:P<0.05,与E组比较A:WesternBlot检测各组心肌组织p-IκB-α和总IκB-α表达所获得的免疫条带;B:WesternBlot检测各组心肌组织内HIF-1α表达所获得的免疫条带;C:各组心肌组织IκB-α磷酸化相对表达量
2.5DMM对内毒素血症大鼠心肌组织内TNF-α和IL-1β含量的影响
C组和DC组大鼠心肌组织内TNF-α和IL-1β水平无明显差异(P>0.05)。与C组比较,E组和DE组心肌组织内TNF-α和IL-1β水平显著升高(P<0.05)。与E组比较,DE组心肌组织内TNF-α和IL-1β水平显著降低(P<0.05)。该结果说明DMM有效抑制内毒素血症大鼠心肌组织内炎性因子的产生,图5。
图5DMM对内毒素血症大鼠心肌组织内TNF-α和IL-1β含量的影响
C:生理盐水处理组;DC:SDH抑制剂DMM+生理盐水处理组;E:LPS处理组;DE:SDH抑制剂DMM+LPS处理组a:P<0.05,与C组比较;b:P<0.05,与E组比较
3、讨论
本研究大鼠内毒素血症模型参照文献BRENT[6]和LIU等[7]介绍的方法建立。DMM的给予剂量参考MILLS等[3]的研究。本研究发现:首先,内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸和SDH含量均升高;其次,SDH抑制剂能显著抑制内毒素血症大鼠心肌组织内的琥珀酸含量升高;最后,SDH抑制剂可能通过调节NF-κB和HIF-1α通路而降低内毒素血症大鼠心肌组织内的炎性反应。
脓毒血症期间,血管功能异常和免疫细胞有氧代谢显著升高导致其余器官组织氧供明显降低,能量获取方式从氧化磷酸化转变为糖酵解(Warburgeffect)[8],同时伴有明显的线粒体功能障碍和代谢中间产物的堆积[9]。在缺血心肌组织中,SDH被反向激活和酮戊二酸脱氢酶催化导致缺血心肌中琥珀酸堆积[2,4,10]。由于琥珀酸有促进炎性反应的作用,本研究检测了内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸含量和其关键调节酶SDH的表达变化和其关系。结果发现,内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸含量和SDH的表达均明显升高,而SDH抑制剂DMM能有效减少内毒素血症大鼠心肌组织内的琥珀酸含量,提示该模型下SDH也被反向激活,进而促进琥珀酸的堆积。SDH的反向激活与CHOUCHANI等的研究结果相似,而与MILLS等的结果相反,其可能原因在于本研究涉及的细胞与前者一致,而与后者不同[2,3]。
已有多个研究证实,琥珀酸作为信号传递因子通过促进HIF-1α的表达而导致细胞内炎性细胞因子IL-1β的产生,其可能机制包括抑制脯氨酰羟化酶活性和诱导活性氧的产生等[3,5,10,11]。本研究中,DMM可抑制琥珀酸堆积而降低HIF-1α的表达和IL-1β的合成,从反面提示该模型中琥珀酸参与HIF-1α介导的炎性通路,其机制可能和以上研究阐述的机制相关。本研究还发现,DMM可抑制琥珀酸堆积而降低IκB-α的磷酸化水平。IκB-α是转录因子NF-κB的抑制性结合蛋白IκB的一个亚型,IκB-α磷酸化后被水解性降解,使NF-κB游离并转位至细胞核中而激活TNF-α等基因的转录[12]。因此,本研究结果提示琥珀酸堆积促进IκB-α磷酸化,进而通过NF-κB介导TNF-α的合成,其具体机制可能是琥珀酸通过产生活性氧和炎性细胞因子而间接促进IκB-α磷酸化和激活NF-κB炎症通路[13]。
缺血心肌细胞中,大量堆积的琥珀酸可通过自分泌的方式,分泌至心肌细胞外并激活心肌细胞膜上的琥珀酸受体1(succinatereceptor1,SUCNR1),使后者活化而加重心肌损伤[5]。由于琥珀酸-SUCNR1通路与炎性反应密切相关,该模型中琥珀酸是否可通过激活SUCNR1而调节HIF-1α和IκB-α有待进一步研究[14]。
总之,本研究发现琥珀酸在内毒素血症大鼠心肌组织中的含量变化和炎性损伤的关系,以及SDH活性抑制剂在其中的保护作用,为研究和治疗脓毒血症心肌损伤提供了新的靶点。
漆波,张翕珠,江飞,张鹤,蔡佳君,李国智.琥珀酸脱氢酶抑制剂对内毒素血症大鼠心肌组织内琥珀酸代谢和炎性损伤的影响[J].第三军医大学学报,2020,42(19):1938-1943.
分享:
糖皮质激素在临床中运用广泛,尤其是在免疫系统疾病及炎症疾病中。糖皮质激素在疾病的治疗中扮演着重要的角色。但糖皮质激素是一把“双刃剑”,大量研究表明,长期或过量使用糖皮质激素可能引起骨吸收增加、骨形成减少,导致骨微结构破坏,从而不可避免地发生糖皮质激素诱导的骨质疏松症(glucocorticoidinducedosteoporosis,GIOP)。
2025-08-14慢性阻塞性肺疾病(chronicobstructivepulmonarydisease,COPD)是一种由于气道或肺泡接触香烟、有毒微粒或气体等导致呼吸功能下降的常见病,以气道、肺实质炎症反应为特征。研究表明,多种炎症细胞参与COPD的肺部炎症,引发气道狭窄、肺泡破坏等病理损伤,从而导致肺功能异常。
2025-07-11Ⅰ期临床试验是药物初步临床药理学评价以及人体安全性评价的新药首次人体试验,其试验成败直接影响新药对后续的开发研究。因此,在Ⅰ期临床试验过程中,任何一个环节均可能对整个新药的试验开发进程造成影响,为了尽可能降低试验风险,需要加强Ⅰ期临床试验过程中各个环节的监督管理意识,保证受试者权益及安全性的同时,保证试验结果科学、有序、合理进行。
2025-06-30许多实验表明,PTK6在许多肿瘤中高度表达,包括乳腺癌、肺癌、卵巢癌等,在肿瘤发生、发展中起着重要的作用,使其作为肿瘤治疗的新靶标引起广泛关注[4]。目前利用PTK6免疫组化染色是验证自噬相关外泌体基因在胰腺癌病理组织中的表达情况,挖掘对胰腺癌具有诊断及预后价值相关基因的一项重要意义。
2025-06-25医学免疫学是重要的基础医学课程,其教学内容涉及抽象的概念、复杂的机制、新兴的技术、广泛的应用,导致学生在学习过程中出现理解难、记忆难的普遍现象[4]。医学免疫学实验教学旨在通过明确的研究对象、亲身经历的实验操作、具象的实验结果,加强学生的记忆,提升学生理解并运用理论课所学专业知识的能力。
2025-06-24目前抑制软骨细胞外基质(extracellularmatrix,ECM)降解是阻止关节软骨退变的关键[3],肾为先天之本,肾主骨、藏精,肝主筋、藏血,肝肾之间精血互生,补益肝肾则精血不虚,得以濡养筋骨,而痹症自除[4]。补肾壮骨方是全国名老中医叶海的经验方,全方以滋肾壮骨、养精益髓为主法,兼有补肝健脾之功效[5]。
2025-05-15功能性便秘(functional constipation,FC)是一种功能性消化系统疾病,其主要表现为持续性排便困难、排便频次减低、大便干结以及排便不尽感等。调查显示,全球有约为 15. 3% 的人患有 FC,且发病率近几年仍有上升趋势。据报道描述,FC 发病与患者的基因特征、日常行为模式、食物摄取偏好、胃肠道微生物群落紊乱及社会心理等各种因素有着紧密联系。
2025-04-29经导管动脉化疗栓塞术(TACE)联合靶向免疫治疗是中晚期肝细胞癌(HCC)患者主要治疗方案[1],但TACE术后肿瘤微环境变化仍不明确,与靶向免疫治疗的协同治疗机制不甚清楚[2]。上述问题研究均需依托肝癌动物模型[3]。目前肝癌动物模型主要有兔VX2肿瘤模型、小鼠原位肝癌模型及大鼠原位肝癌模型[4]。
2025-04-28脑脊液(cerebrospinal fluid,CSF)是由脑室中脉络膜产生的一种无色澄清的液体,循环于各个脑室、蛛网膜下腔、脑池和脊髓中央管中,最终通过蛛网膜粒的微血管进入静脉系统。CSF包括葡萄糖、蛋白质、胆固醇、细胞因子、生长因子和营养素等物质,其与血液由血脑屏障隔开,在脑内形成较为独立的体液系统。
2025-03-25随着肿瘤及各类慢性病年轻化趋势,使女性在育龄期更易发生卵巢早衰、绝经和围绝经期提前、卵巢内分泌功能紊乱和不孕等情。此外,由于年龄相关的生育力下降以及社会、环境污染等原因导致的女性卵巢功能损伤,也会加剧生育力保存的迫切需求。
2025-03-22人气:24264
人气:19289
人气:18218
人气:17596
人气:17200
我要评论
期刊名称:临床和实验医学杂志
期刊人气:4233
主管单位:北京市卫生健康委员会
主办单位:首都医科大学附属北京友谊医院
出版地方:北京
专业分类:医学
国际刊号:1671-4695
国内刊号:11-4749/R
邮发代号:80-494
创刊时间:2002年
发行周期:半月刊
期刊开本:大16开
见刊时间:10-12个月
影响因子:0.000
影响因子:0.000
影响因子:0.000
影响因子:0.000
影响因子:0.000
您的论文已提交,我们会尽快联系您,请耐心等待!
你的密码已发送到您的邮箱,请查看!