摘要:目的 研究p53对p125表达的影响,及其对人肝癌细胞SMMC-7721细胞增殖的影响。方法 用脂质体转染技术,将实验分为3组:对照组(转染空载体pGPU6/GFP/neo-shNC的7721-shNC细胞)、空白组(肝癌细胞SMMC-7721)、实验组(转染p53重组真核表达质粒pGPU6/GFP/neo-p53-shRNA的7721-p53-shRNA细胞)。用蛋白免疫印迹法(WesternBlotting)检测p53和p125蛋白表达水平,用实时荧光聚合酶链反应检测DNA聚合酶δ催化亚基基因1(POLD1)、视网膜母细胞瘤蛋白1(Rb1)、转录因子E2F、细胞周期依赖性蛋白激酶2(CDK2)及细胞周期素E(CylinE)基因的表达水平。结果 实验组、对照组和空白组的p53蛋白表达水平分别为0.22±0.03,0.55±0.07和0.53±0.06,p125蛋白分别为2.86±0.21,2.20±0.28和2.24±0.25,POLD1mRNA分别为1.09±0.13,0.45±0.07和1.00±0,Rb1mRNA分别为4.16±0.29,1.10±0.16和1.00±0,转录因子E2FmRNA分别为2.49±0.12,1.08±0.17和1.00±0,CDK2mRNA分别为1.65±0.08,1.12±0.22和1.00±0,CyclinEmRNA分别为2.78±0.23,1.17±0.31和1.00±0,实验组的上述指标与对照组比较,差异均有统计学意义(均P<0.05)。结论 通过RNA干扰技术反向验证了p53对p125表达的调控作用,其对肝癌细胞增殖具有抑制作用,可能是通过调控Rb1、转录因子E2F、CDK2和CyclinE等细胞周期因子基因表达而实现的。
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DNA聚合酶δ(polδ)是B-家族复制性聚合酶中的一种,在DNA复制、修复、重组及细胞周期调控中均起到重要作用[1,2]。p125是polδ的催化亚基,DNA聚合酶δ催化亚基基因1(POLD1)则是p125的编码基因。在人肝癌组织中POLD1基因表达水平显著高于癌旁组织,相应p125的表达也明显增强[3]。抑癌基因p53可以通过与转录因子Sp1竞争结合位点,进而抑制POLD1的活性[4]。本研究通过RNA干扰p53表达,从侧面验证p53对p125表达的影响,及其对肝癌细胞增殖的抑制作用。
材料与方法
1、材料
细胞人肝癌细胞SMMC-7721,购自中科院上海细胞库。
试剂脂质体Lipofectin-2000、Trizol试剂,均由美国Invitrogen公司生产;RNA干扰所用的siRNA序列,pGPU6/GFP/neo重组真核表达质粒(含有增强型绿色荧光蛋白阅读框,正确插入目的基因cDNA后,能够将目的蛋白融合在EGFP的C端)及阴性对照真核表达质粒pGPU6/GFP/neo-shNC,均由上海吉玛公司生产;SYBRGreenqPCRKit,天根(北京)公司生产;小鼠抗人p53单克隆抗体,山羊抗人DNA聚合酶δ(p125)多克隆抗体,美国SantaCruz公司生产;适配Odyssey系统远红外标记二抗-DyLight680/DyLight800,中杉金桥生物技术产品生产。
仪器7000实时荧光聚合酶链反应(RT-PCR)仪,美国ABI公司产品;MultiskanFC酶标仪,美国ThermoScientific公司产品;Odyssey远红外扫描仪,美国LICOR公司产品;IX70倒置相差显微镜,日本Olympus公司产品。
2、实验方法
2.1细胞培养
参照李燕等[5]的方法,将人肝癌细胞SMMC-7721置于含有10%胎牛血清的RPMI1640培养基中,并置于37℃含5%CO2的温箱培养。
2.2细胞分组与处置方法
将实验分为空白组、对照组和实验组。空白组为正常肝癌细胞SMMC-7721;对照组为转染空载体pGPU6/GFP/neo-shNC的7721-shNC细胞;实验组为转染p53重组真核表达质粒pGPU6/GFP/neo-p53-shRNA的7721-p53-shRNA细胞。
2.3稳定细胞系的鉴定
参照李燕等[5]的方法,用RT-PCR方法检测p53mRNA表达。
2.4主要观察指标
2.4.1用WesternBlotting检测p53和p125蛋白表达[5]5]
按“2.2”的方法进行分组和处置,培养16d后,收集各组细胞,提取总蛋白,用Nanodrop检测蛋白浓度。按照每孔上样60μg,进行SDS-PAGE电泳,然后转膜、封闭、孵育一抗抗体、洗涤、孵育相应种属远红外680和800nm标记二抗,最后用Odyssey远红外扫描仪进行扫描,成像。
2.4.2用RT-PCR检测POLD1、视网膜母细胞瘤蛋白1(Rb1)、转录因子E2F、细胞周期依赖性蛋白激酶2(CDK2)及细胞周期素E(CylinE)的表达水平[5]5]
按“2.2”的方法进行分组和处置,培养16d后,收集各组细胞,参照SYBRGreenqPCRKit说明书制备检测样品,建立PCR产物的荧光扩增曲线和溶解曲线,测定每个样品POLD1、Rb1、转录因子E2F、CDK2及CylinE基因和β-actin的Ct值,每个样品6个复孔。经产物特异性检测后,用7500SoftwareV2.0.5分析数据。
2.5次要观察指标
2.5.1用噻唑蓝法检测细胞生长速率指标[5]5]
按“2.2”的方法进行分组和处置后,调整细胞密度为5×104cell·mL-1,接种至含10%胎牛血清及双抗的RPMI1640培养基中培养。分别培养24,48,72,96,120,144和168h后,用噻唑蓝进行细胞染色,在570和630nm双波长下用酶标仪检测光密度(OD)值。
2.5.2用细胞克隆形成实验测定细胞集落形成率[6]6]
调整单细胞悬液浓度为250cell·mL-1,每孔4mL接种于6孔板,按“2.2”的方法进行分组和处置,每组平行3孔。培养10d后,Giemsa染色,显微镜下观察、计数每孔含50个细胞以上的细胞克隆数并拍照,计算细胞克隆形成率。
3、统计学处理
用SPSS13.0进行统计分析。实验数据用x¯±s表示,比较用t检验。
结果
1、质粒转染SMMC-7721后绿色荧光蛋白的表达
转染12和24h后,每个视野中可见的荧光数不多,强度很弱。转染36和48h后,荧光数目增多,亮度变强。结果见图1。这表明质粒已经成功转染细胞,并能在细胞内表达。
图1质粒pGPU6/GFP/neo-p53-shRNA稳定转染SMMC-7721细胞不同时间荧光表达
2、RNA干扰后RT-PCR方法检测p53mRNA表达
实验组、对照组和空白组的p53mRNA表达水平分别为0.15±0.23,1.05±0.11和1.00±0,实验组与对照组比较,差异有统计学意义(P<0.05),对照组与空白组比较,差异无统计学意义(P>0.05)。这表明稳定转染的质粒对p53mRNA表达水平起到了调节作用。
3、WesternBlotting分析p53RNA干扰后p125蛋白表达水平影响
实验组、对照组和空白组的p125蛋白表达水平分别为2.86±0.21,2.20±0.28和2.24±0.25,p53蛋白表达水平分别为0.22±0.03,0.55±0.07和0.53±0.06,实验组的上述指标与对照组比较,差异均有统计学意义(均P<0.05),而对照组与空白组的上述指标比较,差异均无统计学意义(均P>0.05)。结果见图2。这表明在蛋白水平上p53对p125起着相应的负性调节的作用。
图2WesternBlotting检测转染细胞中p53及p125蛋白表达情况
4、RT-PCR检测基因的表达水平
实验组的POLD1、Rb1、转录因子E2F、CDK2和CyclinE基因表达水平与对照组比较,差异均有统计学意义(均P<0.05),但对照组的上述指标和空白组比较,差异均无统计学意义(均P>0.05)。结果见表1。
5、p53RNA干扰后细胞生长速率的变化
对照组不同时间点的OD值与空白组比较,差异均无统计学意义(均P>0.05)。实验组不同时间点的OD值与对照相比较,差异均有统计学意义(均P<0.05)。结果见表2。
6、细胞克隆形成实验
实验组、对照组和空白组的克隆数分别为437.00±15.74,257.00±9.54和217.00±6.66,克隆形成率分别为45.50%,25.70%和21.90%,实验组的上述指标与对照组比较,差异均有统计学意义(均P<0.05),对照组的上述指标与空白组比较,差异均无统计学意义(均P>0.05)。
表1DNA聚合酶δ催化亚基基因1(POLD1)及其他细胞周期因子mRNA相对表达水平
表2各组细胞不同时间点的生长速率的比较
讨论
肝癌的发生、发展、恶化与癌细胞的恶性增殖息息相关。癌细胞的大量增殖过程需要大量的DNA合成,polδ是唯一与细胞周期相关的真核生物DNA复制酶,其活性的强弱、量的高低,与细胞周期和DNA的复制息息相关,从而推测其与癌细胞的恶性增殖也存在着密切关系。SANEFUJI等[7]通过免疫组织化学的方法显示,肝癌细胞核内polδ催化亚基p125的表达阳性率显著高于正常肝组织,并且p125的表达与细胞的分化及血管侵袭的程度有关。欧贤红等[3]通过RT-PCR及WesternBlotting的方法也发现肝癌组织POLD1基因及p125蛋白的表达水平均明显高于癌旁组织。这提示p125的高表达可能与肿瘤的发生、发展有重要的关系。
p53是一个重要的肿瘤抑制基因,在细胞增殖抑制、凋亡诱导中起重要作用[8,9]。p125的编码基因POLD1启动子上的P4序列可被野生型p53通过与Sp1竞争性结合,从而抑制POLD1基因mRNA的表达[10]。本研究通过RNA干扰技术沉默SMMC-7721肝癌细胞中p53的表达,发现肝癌细胞中p53低表达后,细胞周期相关因子Rb1、转录因子E2F、CDK2、CyclinE和POLD1mRNA的表达量及p125蛋白表达量均明显增高。这说明p53可能通过多种途径参与POLD1和p125的调控。本课题组通过生长速率检测、细胞集落形成率等实验,发现肝癌细胞中p53表达降低后,SMMC-7721细胞的生长速率有所增加,单细胞锚定依赖性成克隆能力增强。这说明p53对p125的调控作用可能是p53对细胞增殖和细胞恶性表型影响的一种新分子通路。
参考文献:
[3]欧贤红,廖柳凤,刘华钢,等.POLD1基因在原发性肝癌中的表达及其意义[J].世界华人消化杂志,2011,19(2):151-155.
[5]李燕,张健.细胞与分子生物学常用实验技术[M].西安:第四军医大学出版社,2009:8-11,62-75,172-191.
[6]朴英实,林贞花.分子病理生物学实验技术指南[M].北京:人民军医出版社,2015:48-50.
[9]尹东亮,卢沛林,尹润龙,等.过表达PRRX1通过p53介导的线粒体凋亡途径诱导肝癌SMMC7721细胞凋亡[J].中国肿瘤生物治疗杂志,2019,26(6):662-668.
廖柳凤,欧贤红,吴琼,徐恒,李艳,刘华钢.shRNA-p53对p125表达及肝癌SMMC-7721细胞增殖的影响[J].中国临床药理学杂志,2020,36(16):2428-2431.
基金:国家自然科学基金资助项目(81260657)
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