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电针对KOA大鼠关节软骨及软骨下骨降解相关蛋白表达的影响

  2024-04-16    上传者:管理员

摘要:目的:探讨电针对KOA大鼠关节软骨及软骨下骨降解相关蛋白表达的影响。方法:16只24月龄SD雄性大鼠随机分为老年组和电针组各8只,另8只6月龄SD雄性大鼠为青年组。电针组接受电针治疗(穴位:双侧“太溪”“足三里”“阳陵泉”“血海”;电针参数:疏密波,密波15Hz,疏波3Hz,电流1mA,每天1次,每次30min,每周5天,连续干预8周),其余两组不做处理。干预8周后取材,ELISA法检测血清Ⅱ型胶原C端肽(CTX-Ⅱ)含量;显微CT检测左侧胫骨软骨下骨微结构;番红-固绿染色在光镜下观察左胫骨平台软骨组织形态结构,改良Mankin’s评分评估关节软骨退变程度;RT-qPCR、Western blot检测aggrecanase-2、SIRT1 mRNA及蛋白表达水平。结果:(1)与青年组大鼠相比,老年组CTX-Ⅱ含量增高(P<0.05);番红-固绿染色显示老年组软骨表面结构破坏严重,出现裂层,软骨与软骨下骨分界不清,形态结构异常,染色不均;改良Mankin’s评分增加(P<0.05);骨密度、骨体积分数、骨小梁数量减少(P<0.05),骨小梁间距增大(P<0.05);aggrecanase-2 mRNA及蛋白表达升高(P<0.05),SIRT1 mRNA及蛋白表达降低(P<0.05)。(2)与老年组大鼠相比,电针组大鼠的CTX-Ⅱ含量降低(P<0.05);番红-固绿染色显示软骨表面平整,未见明显裂层,染色较均匀;改良Mankin’s评分降低(P<0.05);骨密度增加(P<0.05),骨小梁间距减少(P<0.05),骨体积分数、骨小梁数量有增加的趋势(P>0.05),aggrecanase-2 mRNA及蛋白表达降低(P<0.05),SIRT1 mRNA及蛋白表达升高(P<0.05)。结论:电针可通过促进SIRT1的表达,抑制关节软骨降解,改善软骨下骨骨微结构,从而保护关节软骨。

  • 关键词:
  • SIRT1
  • 电针
  • 膝骨关节炎(KOA)
  • 软骨
  • 软骨下骨
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膝骨关节炎(Knee osteoarthritis,KOA)是临床常见疾病,以软骨退变、软骨下骨硬化、细胞外基质代谢失衡为主要病理表现[1],临床表现为膝关节肿胀、疼痛、关节活动受限[2]。据报道,在我国40岁以上骨关节炎的患病率已达38.46%[3],且随着人口老龄化,患病率有上升的趋势。

KOA的治疗有多种方法,西医以药物和手术治疗为主。非甾体类药物虽能起到止痛作用,但长期服用会有一定的副作用,手术治疗费用较昂贵[4]。针灸作为我国的传统医学,治疗KOA疗效显著,中国骨关节炎诊疗指南也推荐用针灸来治疗骨关节炎[5]。沉默信息调节因子同源蛋白1(Silent informationregulator 2 homolog protein 1,SIRT1)又称长寿基因,与衰老相关,在骨关节疾病中发挥重要的作用[6,7,8]。在软骨损伤中,SIRT1可以通过调节线粒体功能、细胞周期等促进软骨修复[9],但具体机制还不明确。本研究通过电针干预KOA大鼠,探究电针对老龄大鼠膝骨关节炎及SIRT1的影响。


1、材料与方法


1.1 实验动物16

只24月龄SD雄性大鼠随机分为老年组和电针组,体质量为709±93g,每组8只;另取8只6月龄SD雄性大鼠为青年组,体质量为501±23g。大鼠由长沙天勤生物技术公司提供,合格证号CXK(湘)2019-0015,饲养于南华大学动物实验中心,室温、湿度、光照适宜,大鼠自由进食。实验方案经南华大学附属第一医院医学伦理委员会批准,批准号NO.202005110032。实验过程中,遵循实验动物管理条例等相关规定。

1.2 主要试剂及仪器

Ⅱ型胶原C端肽试剂盒(中国北京康为世纪,批号:C0681257875),显微-CT(广州中科恺盛医疗科技有限公司,型号:eX-plore Locus SP),台式冷冻离心机(中国湖南湘仪,型号:H1650R),荧光定量RCP仪(美国Therm,型号:PIKOREAL96)、电泳仪(中国北京六一,型号:DYY‐2C),mRNA逆转录试剂盒(北京康为世纪,批号:CW2141),华佗牌电针仪(苏州医疗用品有限公司,型号:SDZ‐V)、华佗牌一次性无菌针(0.25mm×25mm,苏州医疗用品有限公司),光学显微镜(日本OLYMPUS公司,型号:OLYMPUS CH-20)。

1.3 分组与造模

24月龄SD雄性大鼠16只,随机分为老年组和电针组各8只;另8只6月龄SD雄性大鼠为青年组。结合课题组前期研究[10,11,12]及国外类似研究[13,14,15],本研究通过自然衰老方式复制骨关节炎动物模型。

1.4 干预方法

电针组接受电针干预,大鼠在苏醒状态下固定于鼠板,参照《实验动物常用穴位名称与定位第2部分:大鼠》[16]取穴双侧“太溪”“足三里”“阳陵泉”“血海”,针刺3~5mm,采用疏密波,密波15Hz,疏波3Hz,电流1mA,1次/天,每次30min,每周5天,连续干预8周,其余两组不做处理。

1.5 观察指标

大鼠腹腔注射1%戊巴比妥钠(40mg/kg)进行麻醉。摘除眼球,眼眶取血,ELISA法检测外周血CTX-Ⅱ水平;切取左侧胫骨平台2cm左右标本,多聚甲醛固定,显微CT检测左膝软骨及软骨下骨骨微结构;番红-固绿染色观察左膝软骨及软骨下骨组织形态学结构;RT-qPCR、Western blot检测分别右膝软骨及软骨下骨mRNA、蛋白表达。

1.5.1 ELISA检测外周血CTX-Ⅱ

大鼠眼眶取血约4mL,4℃1000G,离心外周血15min,取上清,按ELISA试剂盒说明检测CTX-Ⅱ水平。

1.5.2 Micro-CT检测左胫骨微结构

左膝软骨及软骨下骨多聚甲醛浸润24h,冰箱保存。使用显微CT对左膝软骨下骨进行扫描,扫描参数设置:电流强度0.1mA,图像分辨率1024×1024,扫描时间4min,曝光时间8ms。将扫描后图片导入系统中,计算出各组大鼠骨密度(BMD)、骨体积分数(BV/TV)、骨小梁数量(Tb.N)、骨小梁间距(Tb.Sp)等参数。

1.5.3番红-固绿染色

显微CT检测后,将左膝软骨及软骨下骨放入10%的甲醛EDTA螯合剂脱钙5周,石蜡浸润,切片,厚度约4μm,烘干切片脱蜡。将切片依次放入二甲苯Ⅰ、Ⅱ中10min,100%乙醇(I)中5 min洗去二甲苯;95%乙醇中水化5min,85%乙醇中水化5min,蒸馏水中水化待用。将切片番红染色1~2h,固绿染色5min左右,无水乙醇脱水5min,二甲苯透明5min,最后中性树胶封片,光学显微镜观察,收集图片并分析。

1.5.4 Mankin's评分

采用Mankin's评分量表[12]评估左膝软骨及软骨下骨组织形态结构,包括软骨结构、软骨细胞、基质染色、潮线完整性等四个方面,评分细则见表1。  

表1 Mankin's评分细则    

表2 引物信息  

1.5.5 RT-qPCR法检测aggrecanase-2、SIRT1mRNA表达水平

随机选取5只大鼠样本进行检测,取存于Trizol中右膝关节软骨组织约0.02g,充分研磨,常温下裂解5min,加入200μL三氯甲烷后,静置3min,4℃,12000r/min离心15min后加200μL的异丙醇,静置,4℃,12000r/min离心10min后,去上清。以组织总mRNA为模板,逆转录cDNA,检测右膝软骨及软骨下骨mRNA表达水平。运用primer5软件设计引物,由北京擎科合成引物,引物序列见表2。

1.5.6 Westernblot检测aggrecanase-2、SIRT1蛋白表达水平

随机选取5只大鼠样本进行检测,取0.025g右膝关节软骨组织,加入RIPA裂解液300μL反复研磨,12000rpm离心15min提取蛋白。配制10%的分离胶加入TEMED后灌胶。电泳,转膜,封闭,将一抗按比例稀释(aggrecanase-2 0.2~2μ/mL,β-actin 1:5000),孵育,稀释HRP标记的二抗(HRP goat antimouseIgG 1:5000),共同孵育,ECL发光液孵育1min,显影冲洗,用Image J 1.8.0软件进行分析,检测右膝软骨及软骨下骨aggrecanase-2、SIRT1蛋白表达水平。

1.6 统计方法

采用SPSS26.0软件进行数据分析。计量资料以均值加减标准差表示,多组间及治疗前后比较采用单因素方差分析(One-wayANOVA),组间两两比较方差齐时采用LSD检验,方差不齐时采用Dunnett's T3检验。以P<0.05为差异有统计学意义。


2、结果


2.1 CTX-Ⅱ含量比较

与青年组相比,老年组外周血中CTX-Ⅱ含量增高,差异有统计学意义(P<0.05);与老年组大鼠相比,电针组大鼠外周血中CTX-Ⅱ水平降低,差异有统计学意义(P<0.05),见表3。

表3 各组大鼠CTX-Ⅱ水平比较 

2.2 软骨下骨显微CT比较

青年组骨小梁结构正常,排列紧密;与青年组相比,老年组骨小梁结构异常,数量明显减少,排列稀疏,出现空腔;与老年组相比,电针组骨小梁数量有所增加,骨小梁间距减小空腔减小,见图1。

2.3 软骨下骨微结构比较

与青年组相比,老年组大鼠骨密度、骨体积分数、骨小梁数量减少,差异有统计学意义(P<0.05),骨小梁间距增大,差异有统计学意义(P<0.05);与老年组相比,电针组骨密度增加,差异有统计学意义(P<0.05),骨小梁间距减少,差异有统计学意义(P<0.05),骨体积分数、骨小梁数量有增加的趋势,差异无统计学意义(P>0.05),见表4。

2.4软骨组织番红-固绿染色比较

青年组软骨表面光滑平整,形态结构正常,基质染色均匀,潮线正常;老年组表面结构破坏严重,出现裂隙,染色不均,出现多重潮线;电针组软骨表面平整,未见明显裂层,染色较均匀,细胞结构介于其余两组之间,见图2。

图1 各组大鼠左膝关节软骨下骨显微CT比较    

表4 各组大鼠软骨下骨微结构比较 

图2 各组大鼠关节软骨组织番红-固绿染色比较(×200)   

2.5 Mankin's评分比较

与青年组相比,老年组Mankin's评分增加,差异有统计学意义(P<0.05);与老年组相比,电针组Mankin's评分降低,差异有统计学意义(P<0.05),见表5。

2.6 aggrecanase-2、SIRT1 mRNA表达比较

与青年组相比,老年组右膝关节软骨及软骨下骨aggrecanase-2 mRNA表达升高、SIRT1 mRNA表达降低,差异有统计学意义(P<0.05);与老年组相比,电针组右膝关节软骨及软骨下骨aggrecanase-2 mRNA表达降低、SIRT1 mRNA表达升高,差异有统计学意义(P<0.05),见表6。

2.7 aggrecanase-2、SIRT1蛋白表达水平比较

与青年组相比,老年组右膝关节软骨及软骨下骨aggrecanase-2蛋白表达升高、SIRT1蛋白表达降低,差异有统计学意义(P<0.05);与老年组相比,电针组右膝关节软骨及软骨下骨aggrecanase-2蛋白表达降低、SIRT1蛋白表达升高,差异有统计学意义(P<0.05),见表7、图3。  

表5 各组大鼠Mankin's评分比较    

表6 各组大鼠aggrecanase-2、SIRT1 mRNA表达水平比较   

表7 各组大鼠aggrecanase-2、SIRT1的蛋白表达水平比较  

图3 各组大鼠aggrecanase-2、SIRT1蛋白表达水平比较   


3、讨论


膝骨关节炎属于“痹证”“骨痹”等范畴,按中医理论,肾主骨生髓,肝主筋。《素问·痿论篇》指出“骨枯而髓减,发为骨痿”,《灵枢·经脉》指出“足少阴气绝,则骨枯”。“太溪”为肾经原穴,主治肾虚证;“足三里”是足阳明胃经的主要穴位之一,有通经活络、扶正祛邪的作用;“阳陵泉”为筋之会穴,具有舒筋和壮筋的作用;“血海”是足太阴脾经上的重要穴位,有运化脾血之功,故选用以上穴位进行电针刺激。

针灸治疗KOA疗效确切。一项多中心研究显示[17],电针对KOA患者持续干预8周,每周3次,发现电针可以使患者的疼痛减轻,膝关节功能得到改善,且随访显示疗效持续到26周。基础研究显示,电针可以缓解KOA大鼠关节软骨降解[12],促进KOA大鼠关节软骨及软骨下骨由M1向M2[11],抑制细胞凋亡[10]。

Mankin's评分是公认用来评估软骨退变的通用标准,总分14分,得分越高,软骨退变越严重。本研究中,老年组Mankin's评分为10.88±2.53分;番红-固绿染色显示,表面结构破坏严重,形态结构异常,出现裂隙,染色不均。结合Mankin's评分及番红-固绿染色结果,参考课题组前期研究结果[10,11,12],可视为造模成功。

有研究报道,骨关节炎早期软骨下骨局部会形成骨质疏松,骨微结构会发生改变,表现为骨密度、骨体积分数减少[18,19]。孙光华等[20]研究表明,电针治疗可以提高去卵巢大鼠的骨密度、骨体积分数、骨小梁数量,从而达到治疗骨质疏松的目的。还有研究发现[21]在OA动物模型中,软骨下骨骨小梁数量减少,骨体积和骨密度下降。在本研究中,电针干预后,大鼠骨密度增加,骨小梁间距减少,实验结果说明电针干预可以改善KOA大鼠的骨微结构,这与孙光华等研究结果一致。

KOA的发生由多种因素导致,与软骨细胞、细胞外基质的代谢失衡有关,因此临床上治疗KOA更注重对关节软骨的保护。关节软骨主要由胞外基质和软骨细胞组成,细胞外基质的代谢处于动态平衡中,代谢失衡时就会发生骨关节炎。细胞外基质主要由蛋白聚糖和Ⅱ型胶原构成,Ⅱ型胶原是三螺旋结构,可为关节软骨提供骨架支持,蛋白聚糖附在Ⅱ型胶原表面,对其起保护作用并提供抗压及润滑作用。蛋白聚糖酶是引起蛋白聚糖水解的主要酶之一,蛋白聚糖酶属于ADAMTS家族,其中蛋白聚糖酶-1(aggrecanase-1)和蛋白聚糖酶-2(aggrecanase-2)是主要的蛋白聚糖水解酶,是软骨降解的始动因素[22]。Ⅱ型胶原发生降解时,Ⅱ型胶原C端肽(CTX-Ⅱ)是其中的产物之一,因CTX-Ⅱ较稳定,且在肾中不能被降解,可以小肽形式进入血液,因此常检测血液中的CTX-Ⅱ含量来反映软骨代谢水平。在本研究中,老年组大鼠外周血中CTX-Ⅱ水平较青年组增加,骨组织中aggrecanase-2的mRNA及蛋白表达水平较青年组增加,说明老年组大鼠关节软骨发生了降解。电针干预后,电针组CTX-Ⅱ水平、aggrecanase-2的mRNA及蛋白表达水平均降低,说明电针干预能够抑制KOA大鼠关节软骨的降解。

SIRT1是一种烟酰胺腺嘌呤二核苷酸依赖性的去乙酰化酶,位于染色10q22.1,全长为33660bp,编码747个氨基酸,包含9个外显子、8个内含子。SIRTl有脱乙酰基酶活性,因此有保护膝骨关节炎的作用。SIRT1在基因稳定、肿瘤的发生中起重要作用,与退行性骨关节疾病及衰老疾病密切相关。SIRT1还与软骨细胞增殖分化有关[23,24],参与软骨缺损修复[25,26]。SIRT1可通过调节细胞自噬、促进Ⅱ型胶原的合成等形式延缓OA进展[27],激活SIRT1的表达,可以发挥其去乙酰化酶作用,保护软骨细胞[28]。研究报道[29],OA患者成骨细胞SIRT1表达下降,敲出SIRT1的表达可抑制Ⅱ型胶原的产生。葡萄糖胺可提高SIRT1的mRNA及蛋白的表达,从而保护OA软骨[30]。在本研究中,老年组大鼠SIRT1 mRNA及蛋白表达降低,电针干预后SIRT1 mRNA及蛋白表达升高,说明电针干预能够促进SIRT1的表达。

本研究也还有存在不足的地方,例如电针参数尚无统一标准,参照的是既往研究,未研究不同参数对实验的影响,需要课题组进一步研究。

综上所述,电针可通过促进SIRT1的表达,抑制关节软骨降解,改善软骨下骨骨微结构,从而保护关节软骨。


参考文献:

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基金资助:国家自然科学基金项目(81973917、82105022);湖南省自然科学基金(2021JJ40493、2021JJ30616、2023JJ40586);湖南省卫生健康委项目(20200464);南华大学校级重点项目(USCKF201902K02);


文章来源:黄夏荣,胡莉芝,王金玲,等.电针对KOA大鼠关节软骨及软骨下骨降解相关蛋白表达的影响[J].中医康复,2024,1(05):10-15.

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