摘要:为探讨泻肺清肝饮活性成分D-柠檬烯对慢性阻塞性肺疾病(chronic obstructive pulmonary disease, COPD)小鼠炎症和免疫反应的影响及其机制,将36只6周龄的雄性C57BL/6J小鼠随机分为3组:对照组、模型组和D-柠檬烯组,每组12只。通过LPS和烟熏诱导COPD小鼠模型,D-柠檬烯组小鼠从造模第2天开始每天按照100 mg/kg的剂量给予腹腔注射D-柠檬烯,持续给药至第28天。观察各组小鼠的毛发、行动以及精神状态,并记录小鼠体质量,H-E染色观察小鼠肺组织病理变化,Western blotting检测小鼠肺组织中NF-κB、 p-NF-κB蛋白的表达,ELISA检测血清以及支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid, BALF)中IL-6、 TNF-α、 IL-1β和IL-10的水平,FACS检测外周血中Th17/Treg比值。结果显示,与对照组比较,模型组小鼠体质量减轻,精神萎靡颓废,毛色暗淡,脱毛,活动度降低;肺泡结构紊乱,支气管壁上皮增生,肺组织周围有大量炎症细胞浸润;肺组织中p-NF-κB蛋白表达水平,血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β水平和外周血中Th17/Treg比值均显著升高(P<0.01),血清及BALF中IL-10水平显著降低(P<0.01)。D-柠檬烯用药后显著逆转了上述变化(P<0.01)。该研究提示,D-柠檬烯通过抑制NF-κB通路来恢复Th17/Treg平衡,降低炎性因子的表达,对COPD小鼠具有较好的治疗效果。
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慢性阻塞性肺疾病(chronic obstructive pulmonary disease, COPD)是一种常见的呼吸系统疾病[1]。近年来, 发病率和死亡率急剧上升的COPD严重影响了患者的生活质量[2]。 研究表明, COPD与慢性炎症相关, 主要影响肺实质和周围呼吸道, 从而导致很大程度上不可逆和逐步的气流受限[3-4]。 NF-κB是公认的炎症和免疫反应调节因子[5], 研究表明, 通过药物抑制COPD小鼠NF-κB信号转导可以起到减轻气道炎症的作用[6], 可见NF-κB是COPD中一个重要的信号通路。 泻肺清肝饮是一种多年临床经验方, 具有泻肺化痰、 清肝止咳、 息风平喘的功效[7]。D-柠檬烯是泻肺清肝饮中君药青皮的主要活性成分, 研究发现,D-柠檬烯可通过调节NF-κB来抑制炎症[8], 但D-柠檬烯对COPD的作用尚未见报道。 因此, 本研究通过构建COPD小鼠模型, 评估D-柠檬烯对小鼠肺组织炎症反应的影响, 以进一步揭示泻肺清肝饮对COPD的调控机制。
1、材料与方法
1.1 实验动物
实验动物来源于三峡大学动物实验中心,6周龄的SPF级C57BL/6J雄性小鼠共36只, 体质量17~19 g, 饲养于武汉华联科生物技术有限公司SPF动物房。 适应性喂养7 d后开始实验。 饲养温度(22±2)℃, 相对湿度50%~60%, 人工光照明暗各12 h, 给予充足的食物和水。 实验动物使用许可证号为SYXK(鄂)2018-0104。
1.2 试剂与仪器
佛波酯购自Sigma公司; LPS、D-柠檬烯购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司; 香烟(软精品)购自红金龙有限公司; 伊红、 中性树脂、 二喹啉甲酸(bicinchoninic acid, BCA)蛋白浓度测定试剂盒、 钙离子霉素、 莫能菌素钠购自北京索莱宝科技有限公司; 苏木精购自武汉赛维尔生物科技有限公司; NF-κB抗体、 GAPDH抗体、 辣根过氧化物酶(horseradish peroxidase, HRP)标记的山羊抗兔抗体购自武汉贝茵莱生物科技有限公司; p-NF-κB抗体购自Abcam公司; 抗CD4、 叉头状螺旋转录因子3(forkhead box protein 3, Foxp3)、 CD25、 IL-17抗体购自eBioscience公司; 固定破核剂购自BD bioscience公司。BX53型正置显微镜和IX71倒置荧光显微镜购自Olympus公司; Accuri C6流式细胞仪购自BD公司; Multi-skan GO型全波长酶标仪购自Thermo Fisher Scientific公司。
1.3 方法
1.3.1 COPD模型的构建及鉴定
分别于造模的第1 天和第14 天在小鼠鼻腔内滴注10 μg的LPS(溶于30 μL的PBS中); 第2~28天烟熏, 将小鼠置于50 cm×30 cm×30 cm的玻璃箱中, 玻璃箱内放置燃烧的香烟, 每次暴露30 min, 每天2次[9]。 用H-E染色鉴定造模是否成功。
1.3.2 动物分组及处理
将小鼠随机分为对照组、模型组和D-柠檬烯组, 每组12只。 模型组和D-柠檬烯组构建COPD模型,D-柠檬烯组从造模第2 天开始每天按照100 mg/kg的剂量给予腹腔注射D-柠檬烯, 持续给药至第28 天[10]; 对照组和模型组从造模第2天开始同期给予等量的生理盐水。 每周记录2次小鼠的体质量, 并观察小鼠的毛发状态、 行动情况以及精神状态。 最后一次给药结束后24 h处死小鼠, 取肺组织进行病理和分子检测, 取小鼠支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid, BALF), 离心后保留前3次BALF的上清液进行ELISA和FACS检测。 麻醉并处死小鼠, 从腹主动脉中收集全血进行ELISA检测。
1.3.3 H-E染色观察小鼠肺组织的病理变化
将固定好的小鼠肺组织取横切面,石蜡包埋后进行切片,厚度约为3 μm, 水浴展片后及时烤片, 按照H-E染色法的步骤进行染色, 在显微镜下观察小鼠肺组织的病理变化及炎症情况。
1.3.4 Western blotting检测各组小鼠肺组织中NF-κB、 p-NF-κB蛋白的表达
肺组织剪碎充分裂解后进行蛋白质定量检测,根据定量结果上样电泳,每孔上样量为20 μg蛋白质, 电泳结束后湿转至PVDF膜, 用5 %脱脂奶粉室温封闭, 4 ℃过夜, 加入一抗稀释到所需浓度后室温孵育1 h, 洗膜3次后加入二抗稀释液, 与膜室温孵育1 h, 洗膜3次后进行ECL检测, 利用Tanon GIS软件读取条带的灰度值。
1.3.5 ELISA检测血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β和IL-10的表达
严格按照ELISA试剂盒说明书检测小鼠血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β和IL-10的表达水平。
1.3.6 FACS检测外周血中Th17/Treg的比例
分离小鼠PBMC进行FACS检测。 Th17比例测定: 用1 mL的细胞培养液重悬细胞, 加入2 μL佛波酯(终浓度为50 ng/mL)、 钙离子霉素(终浓度为2 μg/mL)和莫能菌素钠(终浓度约3 μg/mL), 在37 ℃、 5% CO2培养箱中共培养6 h, PBS洗涤后加入2 mL流式染色缓冲液洗涤, 100 μL流式缓冲液重悬细胞, 加入2 μL CD4, 4 ℃避光孵育30 min, 按照固定/破膜试剂盒说明书进行固定, PBS洗涤后加入2 μL IL-17抗体, 4 ℃避光孵育45 min; 400 μL PBS重悬细胞, 4 ℃避光保存, 上机检测。 Treg比例测定: 用100 μL PBS重悬细胞, 加入2 μL CD4和CD25抗体, 4 ℃避光孵育30 min, PBS洗涤后按照固定/破膜试剂盒说明书进行固定, PBS洗涤后加入2 μL Foxp3抗体, 避光孵育45 min, 400 μL PBS重悬细胞, 4 ℃避光保存, 上机检测。
1.4 统计学处理
采用SPSS 20.0软件进行统计分析, 定量资料以
表示,多组间比较采用单因素方差分析,检验水准(α)为0.05。
2、结果
2.1 模型鉴定
H-E染色观察COPD模型造模是否成功, 结果显示, 对照组小鼠肺组织正常, 无炎症细胞浸润; 与对照组比较, 模型组小鼠肺组织内有大量炎症细胞浸润, 肺泡壁破损严重, 这表明模型构建成功。 详见图1。
图1 COPD模型鉴定(H-E染色, ×200)
2.2 D-柠檬烯对小鼠一般状况的影响
对照组小鼠精神状态和活动状况均正常,毛发顺滑光亮。开始烟熏后,模型组个别小鼠出现精神萎靡、毛色暗淡、轻微脱毛、活动度降低的情况,且随着烟熏时间的延长,出现上述情况的小鼠增多;第2次滴鼻后, 个别小鼠出现精神倦怠、 活动力低下、 毛发糟乱、 脱毛严重, 甚至部分皮肤裸露的情况, 且烟熏时间越长, 出现上述情况的小鼠越多。 与模型组比较,D-柠檬烯组小鼠出现精神萎靡、 毛色暗淡、 轻微脱毛、 活动度降低情况的小鼠明显减少, 且未出现精神倦怠和部分皮肤裸露的情况。 与对照组比较, 模型组小鼠体质量减轻最多, 而D-柠檬烯组小鼠体质量较模型组有所增加(图2)。 整个实验过程没有小鼠死亡。
图2 各组小鼠体质量变化情况
2.3 D-柠檬烯对小鼠肺组织病理的影响
H-E染色结果显示, 对照组小鼠肺组织结构正常、 完整, 无炎症细胞浸润; 模型组小鼠肺泡结构紊乱, 平滑肌层增厚, 肺组织周围有大量炎症细胞浸润, 支气管壁上皮增生; 与模型组比较,D-柠檬烯组小鼠肺泡结构基本完整, 肺组织周围炎症细胞的数量明显减少, 支气管壁上皮和平滑肌层偶见异常。 详见图3。
2.4 D-柠檬烯对小鼠肺组织中NF-κB、 p-NF-κB蛋白表达的影响
Western blotting检测小鼠肺组织中NF-κB、 p-NF-κB蛋白的表达, 结果显示, 与对照组比较, 模型组小鼠p-NF-κB蛋白表达水平显著升高(P<0.01); 与模型组比较,D-柠檬烯组小鼠p-NF-κB蛋白表达水平显著降低(P<0.01)。 详见图4。
图3 各组小鼠肺组织H-E染色结果(×200)
图4 各组小鼠肺组织中NF-κB、 p-NF-κB蛋白表达水平的比较
2.5 D-柠檬烯对小鼠血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β和IL-10水平的影响
ELISA检测各组小鼠血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β和IL-10的水平, 结果显示, 与对照组比较, 模型组小鼠血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β水平均显著升高(P<0.01), IL-10水平显著降低(P<0.01); 与模型组比较,D-柠檬烯组小鼠血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β水平均显著降低(P<0.01), IL-10 水平显著升高(P<0.01)。详见图5。
图5 各组小鼠血清及BALF中IL-6、 TNF-α、 IL-1β和IL-10水平的比较
2.6 D-柠檬烯对小鼠外周血中Th17和Treg的影响
FACS检测小鼠外周血中Th17和Treg的比例, 并比较Th17/Treg比值, 结果显示, 与对照组比较, 模型组小鼠外周血中Th17比例显著增加(P<0.01), Treg比例显著减少(P<0.01), Th17/Treg比值显著升高(P<0.01); 与模型组比较,D-柠檬烯组小鼠外周血中Th17比例显著减少(P<0.01), Treg比例显著增加(P<0.01), Th17/Treg比值显著降低(P<0.01)。 详见图6。
图6 各组小鼠外周血中Th17、 Treg比例及Th17/Treg比值的比较
3、讨论
研究表明,泻肺清肝饮活性成分D-柠檬烯具有抗炎、 抗氧化和抗癌等作用[11]。本研究使用D-柠檬烯治疗COPD模型小鼠, 通过观察小鼠行为学和肺组织切片的病理情况发现,D-柠檬烯对COPD模型小鼠具有较好的治疗效果, 能够改善小鼠的精神状态和活动状况, 减轻肺组织的损伤并减少炎症细胞的浸润。
慢性气道炎症和进行性肺功能下降被认为是COPD的2个主要特点, 反复的气道炎症会引起COPD患者气道重构和进行性气道堵塞[12]。 研究表明, 多种炎症细胞及细胞因子参与COPD的发生和发展, COPD患者肺实质和周围呼吸道中的肺泡巨噬细胞、 嗜中性粒细胞、 T细胞和从循环中募集的ILC数量增加, 这些炎症细胞和包括上皮细胞、 内皮细胞以及成纤维细胞在内的结构细胞能够分泌多种促炎介质, 包括细胞因子、 趋化因子、 生长因子和脂质介质等[13]。 Th17和Treg都是由CD4+T细胞分化而来的, 研究认为Th17/Treg的失衡与COPD的发生和发展有着密切的联系[14]。 Th17能够分泌IL-17, IL-17与其受体结合后能够促进IL-1β和IL-6等炎性因子的释放, 促进气道炎症反应的发生和发展, 加快COPD的进展[15]。 Treg主要通过分泌TGF-β、 IL-10和IL-35等抗炎因子来抑制免疫细胞的活性, 减轻过度炎症反应引起的组织损伤, 发挥免疫调节的作用[16]。 本研究结果显示, COPD模型小鼠外周血中Th17比例增加, Treg比例减少, 血清及BALF中促炎因子IL-6、 TNF-α和IL-1β水平升高, 抗炎因子IL-10水平降低, 而经D-柠檬烯治疗后COPD模型小鼠外周血中Th17比例减少, Treg比例增加, 血清及BALF中炎性因子IL-6、 TNF-α和IL-1β水平均降低, IL-10水平升高, 这些结果提示D-柠檬烯能够通过调节Th17、 Treg比例来调控促炎和抗炎因子的释放, 缓解COPD中的炎症反应。
NF-κB在细胞炎症反应和免疫反应过程中发挥关键作用, NF-κB的异常激活会引起慢性炎症和自身免疫性疾病等[17]。 NF-κB通路有众多的激活因子, IL-6、 IL-8、 IL-1β、 TNF-α等炎性因子, 趋化因子及黏附分子等均能够激活NF-κB通路, NF-κB活化后又诱导大量炎性因子释放, 促进炎症细胞的浸润, 加重组织损伤[18-19]。 研究表明, NF-κB参与COPD的气道炎症反应, 抑制NF-κB能够减轻COPD气道炎症[20]。 本研究结果显示, COPD模型小鼠肺组织中p-NF-κB的表达显著升高,D-柠檬烯治疗后p-NF-κB的表达显著降低, 这表明D-柠檬烯能够通过抑制NF-κB通路的激活减轻COPD气道炎症和免疫反应。
综上所述,泻肺清肝饮活性成分D-柠檬烯能够通过抑制NF-κB通路的激活来调节Th17/Treg紊乱和炎性因子的释放, 从而缓解COPD模型小鼠的炎症和免疫反应。
参考文献:
[7]张军,鲁焱,李旭成,等.泻肺清肝饮治疗哮喘热哮证的临床研究[J].辽宁中医杂志,2014,41(10):2154-2157.
基金资助:第六批全国老中医药专家学术经验继承工作项目[国中医药人教发(2017)29号]; 湖北省卫生健康委员会中医药科研项目(ZY2021Q013);
文章来源:张军,舒婷婷,李汉永,等.D-柠檬烯抑制NF-κB通路介导COPD小鼠的炎症和免疫反应[J].现代免疫学,2024,44(06):494-499.
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慢性阻塞性肺疾病(Chronicobstructivepulmonarydisease,COPD),其发病与基因和环境相互作用有关[1],而吸烟和环境烟草烟雾的吸入是COPD发病的重要因素[2-3]。研究表明,吸烟可导致COPD发生,且吸烟量越大、吸烟年限越长、吸烟开始年龄越小,COPD的发病率越高,同时戒烟是COPD患者减缓肺功能损害最有效的措施[4]。
2025-09-05慢性阻塞性肺疾病(chronicobstructivepulmonarydisease,COPD)是一种好发于中老年的常见的呼吸道疾病,其在全球的患病率和死亡率较高,导致了严重的疾病负担。COPD患者的管理目标不仅是缓解症状和改善生活质量,还包括控制病情进展,减少急性加重和住院率[1]。
2025-09-03全球范围内COPD的发病率和死亡率均处于较高水平,在我国,COPD是继心脑血管疾病之后的第三大致死原因[2]。尽管现有的药物治疗(如支气管扩张剂、糖皮质激素及长期氧疗等)能够在一定程度上缓解症状、延缓疾病进程,但由于慢阻肺病程长、症状复杂,患者常因活动受限而导致生活质量下降、情绪低落,甚至抑郁焦虑等心理问题。
2025-08-26慢性阻塞性肺疾病(COPD)作为一类特征在于持续性气流受限的呼吸系统相关疾病,主要发病人群为中老年人,临床基本症状包括咳嗽、咳痰、胸闷和气喘等,患者受感染等因素的影响会造成病情加重,严重者会危及生命。目前对于COPD的治疗方法以减缓肺功能不可逆损伤的发生和预防急性加重的出现为主要目标,除了药物治疗之外通常还会采用呼吸支持的方式。
2025-08-18现阶段,西医临床大多选择呼吸支持、抗生素及支气管扩张剂等对症治疗COPD,虽能不同程度地缓解患者临床症状,控制病情急性发作,但无法从根本上治疗该病,患者病情可反复发作[3]。中医在该病治疗中具有非常独特的优势。杏苏二陈方具有燥湿化痰、宣肺解表的作用,研究发现,其在COPD治疗中效果显著[4]。
2025-08-14慢性阻塞性肺疾病急性加重期(AECOPD)是指患者的呼吸道症状急性恶化,进而出现咳嗽、咳痰、气短加重症状,或痰量增加,或咯黄痰,肺功能明显下降,常伴有明显呼吸衰竭等多种并发症,严重影响生活质量。若不及时采取有效的治疗措施,患者发生死亡的风险非常高[2]。
2025-08-13烟草使用、遗传因素、环境污染和感染是COPD的主要危险因素〔5〕。慢性阻塞性肺病导致的高发病率、高死亡率和低生活质量已造成了严重经济和社会负担〔6〕。当前治疗AECOPD的西医药物主要有支气管扩张剂、吸入性皮质类固醇〔7〕、抗生素〔8〕、抗胆碱能药物〔9〕等。
2025-08-08目前西医多通过抗炎药、支气管扩张剂和其他药物(如祛痰药、抗氧化剂等)治疗该病,其中支气管扩张剂可有效解除气流受限,是治疗COPD的基本药物。茚达特罗格隆溴铵作为含2种支气管扩张剂的复方制剂,不但可拮抗支气管黏液生成,且能减少气流受限,改善肺部通气状态,但单一药物疗效有限[2]。
2025-07-30有研究[2]显示,COPD是世界上致死率较高的疾病之一。COPD病程较长,临床上治疗方法主要包括药物治疗和非药物治疗,均需患者长期坚持。呼吸训练是一种非药物治疗方法。多项研究[3-5]表明,呼吸训练能提高患者的活动能力,缓解COPD患者呼吸困难症状,减少疾病急性加重率和住院时间。
2025-07-17衰弱是自然衰老过程中由于健康缺陷的累积而导致,患者通常出现机体储备功能减弱,对环境易感性增加等现象[1]。慢性阻塞性肺疾病(chronicobstructivepulmonarydisease,COPD)常见于老年患者,有研究显示超过20%的COPD患者存在衰弱症状,衰弱、炎症、吸烟史等是COPD患者预后不良的危险因素[2]。
2025-07-15人气:13867
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期刊名称:辽宁中医杂志
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主管单位:辽宁省卫生厅
主办单位:辽宁中医药大学,辽宁省中医药学会
出版地方:辽宁
专业分类:医学
国际刊号:1000-1719
国内刊号:21-1128/R
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创刊时间:1958年
发行周期:月刊
期刊开本:大16开
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