首页 > 论文范文 > 医药卫生论文 > 肿瘤科论文 > 宫颈癌论文 > NGF/TrkA轴对宫颈癌SiHa细胞增殖、凋亡和侵袭的影响

NGF/TrkA轴对宫颈癌SiHa细胞增殖、凋亡和侵袭的影响

2023-08-15 120 上传者：管理员

摘要：探讨神经生长因子（NGF）/原肌球蛋白受体激酶A(TrkA)轴对宫颈癌SiHa细胞增殖、凋亡和侵袭的影响。方法体外培养正常宫颈上皮细胞HUCEC和宫颈癌细胞SiHa，将SiHa细胞分为对照组（正常培养）、L-NGF组（50μg/L重组人NGF蛋白）、H-NGF组（100μg/L重组人NGF蛋白）、H-NGF+L-K252a组（100μg/L重组人NGF蛋白+50μg/L K252a）、H-NGF+H-K252a组（100μg/L重组人NGF蛋白+100μg/L K252a）。Western blot检测NGF、TrkA、E-钙黏蛋白（E-cadherin）、N-钙黏蛋白（N-cadherin）、波形蛋白（Vimentin）表达；CCK-8法检测SiHa细胞增殖情况；流式细胞术检测SiHa细胞凋亡；划痕愈合实验测定细胞迁移；Transwell试验测定细胞侵袭。结果 SiHa细胞较HUCEC细胞NGF、TrkA水平升高（P<0.01）。与对照组相比，L-NGF组、H-NGF组NGF、TrkA水平，增殖活力，迁移率，侵袭细胞数量以及N-cadherin、Vimentin蛋白水平显著增加，凋亡率、E-cadherin蛋白水平显著下降（P<0.05），且H-NGF组较L-NGF组以上指标差异更显著（P<0.05）；与H-NGF组相比，H-NGF+L-K252a组、H-NGF+H-K252a组NGF、TrkA水平，增殖活力，迁移率，侵袭细胞数量以及N-cadherin、Vimentin蛋白水平显著降低，凋亡率、Ecadherin蛋白水平显著升高（P<0.05），且H-NGF+H-K252a组较H-NGF+L-K252a组以上指标差异更显著（P<0.05）。结论下调NGF/TrkA轴可以抑制宫颈癌SiHa细胞增殖、侵袭，促进其凋亡。

关键词：
TrkA
受体
宫颈肿瘤
神经生长因子
细胞凋亡
细胞增殖
肿瘤浸润
加入收藏

宫颈癌是常见的妇科恶性肿瘤之一，严重威胁女性健康[1]。多数宫颈癌是由人乳头瘤病毒（HPV）感染引起的[2]。此外，转移和复发是宫颈癌相关死亡的主要原因，远处转移患者预后较差[3]。因此，明确宫颈癌进展和转移机制并从中找到治疗该病新的生物标志物和治疗靶点至关重要。神经生长因子（NGF）及其高亲和力受体原肌球蛋白受体激酶A(Trk A）是研究癌症的常见通路。Marsland等[4]发现，下调NGF/Trk A轴可抑制黑色素瘤的进展。Gao等[5]也发现NGF和Trk A蛋白水平在肺鳞状细胞癌患者中增加，下调NGF/Trk A轴可抑制癌细胞的增殖。近期，Faulkner等[6]发现，NGF和Trk A在宫颈鳞状细胞癌中过表达。但是，关于NGF/Trk A轴对宫颈癌细胞恶性生物学行为影响的研究鲜有报道，本研究旨在探讨可否通过下调NGF/Trk A轴抑制宫颈癌Si Ha细胞的恶性生物学行为。

1、材料与方法

1.1细胞及主要材料

正常宫颈上皮细胞HUCEC购自深圳市豪地华拓生物科技有限公司；宫颈癌Si Ha细胞购自上海雅吉生物科技有限公司；NGF/Trk A轴抑制剂K252a购自无锡云萃生物科技有限公司；兔源NGF一抗、Trk A一抗、E-钙黏蛋白（E-cadherin）一抗、N-钙黏蛋白（N-cadherin）一抗、波形蛋白（Vimentin）一抗、辣根过氧化物酶（HRP）标记的山羊抗兔Ig G二抗购自Abcam；重组人NGF蛋白购自伊艾博（武汉）科技股份有限公司；CCK-8细胞增殖及毒性检测试剂盒购自北京索莱宝科技有限公司；膜联蛋白V(Annexin V）-异硫氰酸荧光素（FITC）/碘化丙啶（PI）细胞凋亡试剂盒购自杭州联科生物技术股份有限公司。

1.2细胞培养及分组

将HUCEC和Si Ha用DMEM高糖培养基（含10%胎牛血清、1 000 U/m L氨苄青霉素、100 g/L卡那霉素）在37℃、5%CO2细胞培养箱中培养。每2 d用胰酶消化传代。

将Si Ha细胞分为对照组（正常培养）、L-NGF组（50μg/L重组人NGF蛋白）、H-NGF组（100μg/L重组人NGF蛋白）、H-NGF+L-K252a组（100μg/L重组人NGF蛋白+50μg/L K252a）、H-NGF+H-K252a组（100μg/L重组人NGF蛋白+100μg/L K252a）。处理24 h后用于后续实验。

1.3 Western blot检测上皮-间充质转化（EMT）相关蛋白表达

通过RIPA裂解液提取总蛋白。二辛可宁酸（BCA）蛋白质检测试剂盒检测蛋白质浓度。将等量的总蛋白质经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE），然后转移到聚偏二氟乙烯（PVDF）膜。用5%脱脂奶粉在37℃下封闭PVDF膜1 h。通过与一抗NGF(1︰1 000）、Trk A(1︰2 000）、E-cadherin(1︰2 000）、N-cadherin(1︰2 000）、Vimentin(1︰1 000）、GAPDH(1︰1 000）在4℃下孵育过夜。次日将膜与二抗在常温下继续反应1 h。最后加入电化学发光试剂显色。GAPDH作为内参，并通过Image J软件对蛋白质条带进行灰度分析。

1.4 CCK-8法检测Si Ha细胞增殖情况

将各组SiHa细胞以每孔5×103个细胞的密度接种在96孔培养板中，每组设3个复孔。孵育4、24、48、72、96、120 h后，向每个孔中加入10μL CCK-8溶液。在37℃孵育2 h后，使用酶标仪在450 nm波长处测量每孔的光密度（OD）。

1.5流式细胞术检测Si Ha细胞凋亡

将每组Si Ha细胞收集到离心管中，磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤细胞2次后，500μL Bing Buffer重悬细胞。加入5μL Annexin V-FITC和5μL PI，并在室温避光条件下孵育15 min，使用流式细胞仪检测细胞凋亡率。

1.6划痕愈合实验测定Si Ha细胞迁移

当各组Si Ha细胞在6孔板中生长达到80%～90%时，使用无菌200μL移液器吸头在细胞中制造划痕，然后用饥饿培养基洗涤以去除未贴壁的细胞。培养24 h后，用光学显微镜对划痕进行成像，计算细胞迁移率。迁移率=（0 h划痕宽度-24 h划痕宽度）/0 h划痕宽度×100%。

1.7 Transwell实验测定Si Ha细胞侵袭

Transwell室预包被基质胶（在培养基中稀释至1 g/L）。Si Ha细胞在无血清培养基中重悬后，将6×104个/m L细胞接种在上室，并将600μL含有15%胎牛血清的培养基加入下室。培养24 h，用棉签擦拭Transwell小室上表面。将Transwell下室中的细胞在甲醇中固定30 min,0.1%结晶紫染色20 min，然后用PBS洗涤。在显微镜下观察染成紫色细胞的数量并进行记录，即为侵袭细胞的数量。

1.8统计学方法

采用SPSS 25.0软件处理数据。数据经正态分布、方差齐性检验后以均数±标准差表示，2组间均数比较采用独立样本t检验，多组间比较用单因素方差分析，组间多重比较用SNK-q检验，P<0.05为差异有统计学意义。

2、结果

2.1NGF、Trk A在HUCEC和Si Ha细胞中的表达

Si Ha细胞较HUCEC细胞NGF、Trk A水平升高（P<0.01），见图1、表1。

图1 HUCEC及Si Ha细胞中NGF、Trk A蛋白表达免疫印迹图

2.2各组Si Ha细胞NGF、Trk A蛋白表达水平比较

与对照组相比，L-NGF组、H-NGF组NGF、Trk A水平上调，且H-NGF组NGF、Trk A水平高于L-NGF组（P<0.05）；与H-NGF组相比，H-NGF+L-K252a组、H-NGF+H-K252a组NGF、Trk A水平下降，且H-NGF+H-K252a组下降更显著（P<0.05），见表2、图2。

表1 HUCEC及SiHa细胞中NGF、TrkA蛋白表达水平比较

表2各组Si Ha细胞中NGF、Trk A蛋白表达水平比较

图2各组SiHa细胞中NGF、TrkA蛋白表达免疫印迹图

2.3各组Si Ha细胞增殖活力比较

与对照组相比，L-NGF组、H-NGF组24、48、72、96和120 h OD450增加（P<0.05），且H-NGF组OD450值高于L-NGF组（P<0.05）；与H-NGF组相比，H-NGF+L-K252a组、H-NGF+H-K252a组24 h、48 h、72 h、96 h、120 h OD450值下降（P<0.05），且H-NGF+H-K252a组下降更显著（P<0.05），见表3。

2.4各组Si Ha细胞凋亡率比较

与对照组相比，L-NGF组、H-NGF组凋亡率下降，且H-NGF组凋亡率低于L-NGF组（P<0.05）；与H-NGF组相比，H-NGF+L-K252a组、H-NGF+H-K252a组凋亡率升高，且H-NGF+H-K252a组较H-NGF+L-K252a组上升更显著（P<0.05），见图3、4。

2.5各组Si Ha细胞侵袭、迁移以及EMT相关蛋白水平的比较

与对照组相比，L-NGF组、H-NGF组的迁移率、侵袭细胞数量以及N-cadherin、Vimentin蛋白水平增加，E-cadherin蛋白水平下降（P<0.05），且H-NGF组较L-NGF组差异更显著（P<0.05）；与H-NGF组相比，H-NGF+L-K252a组、H-NGF+H-K252a组迁移率、侵袭细胞数量以及N-cadherin、Vimentin蛋白水平降低，E-cadherin蛋白水平升高（P<0.05），且H-NGF+H-K252a组差异更显著（P<0.05），见图5—7，表4、5。

表3各组Si Ha细胞在不同时间增殖活力比较

图3流式细胞术检测各组SiHa细胞凋亡水平

图4各组SiHa细胞凋亡率的比较

3、讨论

宫颈癌是常见的妇科恶性肿瘤之一，全世界每年约有500万例确诊[7]。宫颈癌复发和治疗效果差主要是由细胞的侵袭和转移引起的[8]。EMT与宫颈癌的发展密切相关，是该病患者预后不良的主要原因之一[9]。因此，研究宫颈癌细胞迁移、侵袭以及EMT发生机制对于治疗宫颈癌至关重要。

表4各组Si Ha细胞迁移率和侵袭细胞数量的比较

表5各组Si Ha细胞中EMT相关蛋白表达水平比较

NGF因其在神经系统发育中的作用而被广泛研究，NGF通过激活Trk A在神经发育过程中驱动神经元生长（轴突生成）[6]。近年来研究显示，癌细胞表达神经生长因子（如脑源性神经营养因子、胶质细胞源性神经营养因子），提高肿瘤生长速度，刺激肿瘤细胞转移；肿瘤去神经支配可以阻止肿瘤进展[10]。因此，抑制肿瘤微环境中的神经元生成被视为创新疗法的新靶点[5]。在胃癌中，NGF过表达已被证明可以促进肿瘤细胞生长[11]。在结肠癌中，交感神经和副交感神经参与刺激肿瘤生长和转移，下调NGF可以抑制大鼠结肠癌细胞增殖和血管生成，并降低肿瘤体积和质量[12]。本研究通过检测正常宫颈上皮细胞HUCEC和宫颈癌细胞Si Ha中NGF、Trk A蛋白水平，结果发现Si Ha细胞较HUCEC细胞NGF、Trk A水平显著升高，提示NGF/Trk A轴在宫颈癌细胞中被激活。本研究还发现，NGF处理后Si Ha细胞增殖活力升高，细胞凋亡率降低，提示NGF过表达促进宫颈癌的发生，而NGF/Trk A信号轴抑制剂K252a处理Si Ha细胞后NGF、Trk A水平下调，且Si Ha细胞增殖活力降低，凋亡率升高，表明下调NGF/Trk A信号轴可能抑制宫颈癌的发生与发展。

图5各组Si Ha细胞迁移情况（划痕愈合实验，×100)

图6各组SiHa细胞侵袭情况（结晶紫染色，×200)

图7各组SiHa细胞中E-cadherin、N-cadherin、Vimentin蛋白表达免疫印迹图

EMT是上皮肿瘤细胞失去上皮特征并获得间充质表型的过程，是肿瘤细胞获得更高侵袭和转移能力的关键步骤。肿瘤细胞利用EMT作为中间表型来实现自我更新并适应其微环境[13]。在EMT过程中，上皮细胞通过失去细胞极性，上皮标志物E-cadherin表达减少，间充质标志物N-cadherin、Vimentin表达增多，从而获得间充质表型[14]；且获得间充质表型已被证明可增强肿瘤细胞对化疗的耐药性并导致预后不良[15]。本研究结果发现，NGF过表达后，Si Ha细胞迁移率、侵袭细胞数量以及N-cadherin、Vimentin蛋白水平增加，E-cadherin蛋白水平下降，表明激活NGF/Trk A轴可能促进Si Ha细胞EMT过程，进而加快肿瘤细胞的迁移和侵袭，最终促进宫颈癌的发展。为了进一步证实该结论，笔者用H-NGF处理Si Ha细胞后加用K252a干预，结果发现，K252a处理后SiHa细胞迁移率、侵袭细胞数量以及N-cadherin、Vimentin蛋白表达减少，E-cadherin蛋白表达升高，且高剂量K252a抑制Si Ha细胞迁移、侵袭以及EMT过程更明显，表明通过抑制NGF/Trk A轴来抑制Si Ha细胞迁移和侵袭可能是治疗宫颈癌的潜在治疗策略。

综上所述，下调NGF/Trk A信号通路可抑制Si Ha细胞EMT过程，进而抑制肿瘤细胞的迁移和侵袭。

基金资助:广西自然科学基金项目(2022GXNSFBA035476);广西高校中青年教师科研基础能力提升项目(2019KY0122);

文章来源:龙颖,黄芳依,韦有生.NGF/TrkA轴对宫颈癌SiHa细胞增殖､凋亡和侵袭的影响[J].天津医药,2023,51(08):809-814.