摘要:目的探讨黄芪甲苷Ⅳ通过调控核因子E2相关因子2(Nrf2)/血红素氧合酶-1(HO-1)信号通路对尿毒症模型大鼠血管内皮的保护作用。方法将大鼠分为假手术组、模型组、黄芪甲苷低(100mg/kg)、高(200mg/kg)剂量组、Nrf2抑制剂组(2mg/kg)、黄芪甲苷高剂量+Nrf2抑制剂(200mg/kg+2mg/kg)组,每组12只。各组腹腔注射干预给药结束后,用酶联免疫吸附法(ELISA)测血清肌酐(Scr)和血尿素氮(BUN)、血β2-微球蛋白(β2-MG)、白细胞介素-6(IL-6)和肿瘤坏死因子-α(TNF-α)含量;透射电镜观察肾组织血管结构病变;免疫荧光法检测活性氧簇(ROS);免疫荧光共定位法测血管内皮标志物CD31与Nrf2在肾组织中表达;免疫组化法检测肾组织HO-1及血管内皮损伤相关标志物-内皮型一氧化氮(eNOS)在肾组织中表达;蛋白免疫印迹法检测血管生成素样蛋白6(ANGPTL6)、单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)表达。结果与假手术组相比,模型组大鼠肾小管周毛细血管管腔红细胞聚集、内皮细胞肿胀及增大、管腔狭窄及受压严重;Scr、BUN、β2-MG、TNF-α及IL-6等分泌量变化明显(P<0.05);肾组织ROS、肾血管组织HO-1及eNOS阳性表达;CD31与Nrf2阳性共表达、肾组织ANGPTL6及MCP-1蛋白表达水平均升高(P<0.05)。与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠肾小管周毛细血管管腔红细胞聚集、内皮细胞肿胀及增大缓解;血清毒素及炎性因子水平、肾组织ROS、肾血管内皮损伤相关蛋白ANGPTL6、MCP-1、eNOS表达降低(P<0.05);肾血管组织HO-1、CD31与Nrf2阳性共表达水平均升高(P<0.05);Nrf2抑制剂组大鼠肾小管周毛细血管管腔红细胞聚集、内皮细胞肿胀、增大进一步加重。上述指标变化趋势与黄芪甲苷Ⅳ剂量组相反(P<0.05)。结论黄芪甲苷Ⅳ可能通过促进Nrf2/HO-1通路介导的抗炎、抗氧化途径激活,减轻尿毒症大鼠肾血管内皮损伤。
加入收藏
尿毒症(uremia)是各种晚期的肾脏病共有的临床综合征。在中国,尿毒症发病率和病死率随着老龄化人口的增加而不断上升[1]。目前研究发现,血管内皮功能障碍,是尿毒症的首要死亡原因,也是临床研究的重点和难点问题[2]。核因子E2相关因子2(nuclearfactor-E2-relatedfactor2,Nrf2)/血红素氧合酶-1(hemeoxygenase1,HO-1)在细胞抗氧化损伤和抗炎性损伤过程中发挥主要作用,并参与血管内皮损伤过程[3]。黄芪甲苷Ⅳ(astragalosideⅣ)是中药黄芪的主要活性成分,具有抗炎、降血脂、改善糖尿病引起的血管病变和心肌病等作用[4],但其作用机制尚不清楚,本文通过肾脏切除法建立大鼠尿毒症模型,对此进行探讨。
1、材料与方法
1.1 材料
1.1.1 动物:
SPF级SD雄性大鼠,体质量:220~240g[广东省医学实验动物中心,生产许可证号为SCXK(粤)2016-0002],动物质量合格证号为省科委2000A027。
1.1.2 主要试剂
黄芪甲苷Ⅳ(上海阿拉丁生化科技有限公司);Nrf2抑制剂(MedchemExpress公司);白细胞介素-6(IL-6)酶联免疫(ELISA)试剂盒和肿瘤坏死因子-α(TNF-α)ELISA试剂盒(武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司);肌酐(Scr)ELISA试剂盒(上海一研生物科技有限公司);尿素氮(bloodureanitrogen,BUN)ELISA试剂盒(上海雅吉生物科技有限公司);血β2-微球蛋白(β2-microglobulin,β2-MG)ELISA试剂盒(上海研生实业有限公司);兔抗大鼠一抗Nrf2、HO-1(ProteinechGroup公司);小鼠抗CD31、兔抗内皮型一氧化氮(endothelialnitricoxidesynthase,eNOS)、血管生成素样蛋白6(angiopoietinlikeprotein6,ANGPTL6)、单核细胞趋化蛋白-1(monocytechemotacticprotein-1,MCP-1)等抗体(Abcam公司)。
1.2 方法
1.2.1 大鼠的分组及处理:
取70只大鼠,按文献[5]方法切除占肾脏1/3的上极和下极左肾肾脏,术后1周进行完全摘除右肾手术,制备尿毒症模型,4周后大鼠成活,随机取2只大鼠剩余肾脏进行镜检,若出现肾血管内皮出现水肿、增大现象,视为造模成功,共造模成功60只(有3只于术后1周死亡,2只术后3周死亡,3只手术失败死亡),将造模成功的大鼠随机分为模型组、黄芪甲苷低(100mg/kg)、高(200mg/kg)剂量组、Nrf2抑制剂组(2mg/kg)、黄芪甲苷+Nrf2抑制剂组(200mg/kg+2mg/kg),每组12只。另取12只大鼠,仅行麻醉和暴露双肾,不做手术切除,作为假手术组。黄芪甲苷及Nrf2抑制剂参照文献[6,7]设置剂量,用0.9%氯化钠溶液稀释成为10.0、20.0、0.2mg/mL的混悬液,按10mL/kg的剂量腹腔注射给药,黄芪甲苷给药3次/d,Nrf2抑制剂给药1次/d;黄芪甲苷+Nrf2抑制剂组给予黄芪甲苷的同时腹腔注射给予Nrf2抑制剂;假手术组及模型组给予等量0.9%氯化钠溶液,各组均连续给药4周,给药期间观察大鼠行为及死亡状况。
1.2.2 采集标本及透射电镜观察肾血管病变:
末次给药12h后,麻醉大鼠,取腹主动脉血3mL,3000r/min离心10min后,取上清液于-20℃冰箱保存备用。处死大鼠,解剖取剩余肾脏组织,经磷酸缓冲盐冲洗后,切取肾组织0.5g置于-80℃冰箱保存,剩余肾组织分成2部分,一部分送于电镜室进行镜检并观察拍照;另一部分制成冰冻切片备用。
1.2.3 ELISA检测大鼠血清Scr、BUN、β2-MG、TNF-α、IL-6水平:
以ELISA试剂盒说明书方法检测Scr、BUN、β2-MG及血清TNF-α、IL-6水平。
1.2.4 免疫荧光检测肾组织ROS蓄积水平:
取部分新鲜冰冻切片,加入二氢乙啶(dihydroethidium,DHE)探针并于室温下孵育20min后,置于荧光显微镜下观察组织染色情况。并随机取5个视野,用ImageProPlus5.0图像分析系统以单位面积内绿色荧光强度强弱代表细胞中ROS相对水平。
1.2.5 免疫荧光检测CD31与Nrf2在肾组织中表达:
取切片,加入特丁基对苯二酚及0.25%曲拉通(TritonX-100)处理透化后,加入一抗(兔抗鼠Nrf2、小鼠抗大鼠CD31,(1∶200))4℃孵育过夜,加入二抗(TRITC标记的山羊抗兔IgG、FITC标记的山羊抗小鼠IgG,稀释倍数为1∶200)孵育显色后,用防猝灭液封片后于激光共聚焦显微镜下观察,拍照。
1.2.6 免疫组化法检测肾组织HO-1、eNOS阳性表达:
抗原修复后,加入一抗抗体(HO-1、eNOS,1∶500)室温孵育过夜后,加入羊抗兔二抗(1∶1000)室温孵育后,加DAB显色、苏木精复染封片后于光镜下拍照,随机取5个视野,观察肾组织血管染色情况,并采用ImageProPlus5.0图像分析系统分析被染成棕黄色的区域域面积,结果以5个视野阳性表达的平均吸光度值表示。
1.2.7 Westernblot检测大鼠肾组织ANGPTL6、MCP-1蛋白表达水平:
将-80℃冻存的肾组织,4℃解冻后,于冰上用组织匀浆器匀浆,离心分离后,用蛋白提取试剂盒提取蛋白,BCA法检测蛋白浓度后,取50μL进行电泳和转膜反应,并加入一抗(ANGPTL6、MCP-1(1∶1000),β-actin(内参,1∶2000)抗体4℃孵育过夜,加入HRP标记的羊抗兔二抗溶液(1∶2000)室温孵育4h,用化学发光法显色,以化学发光仪观察条带并拍照。
1.3 统计学分析
以SPSS22.0软件对实验数据进行统计分析,计量资料以均数±标准差(x¯±s)表示,组间比较进行单因素方差分析,进一步两组间比较行SNK-q检验。
2、结果
2.1 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠一般行为的影响
假手术组大鼠无死亡。模型组、黄芪甲苷+Nrf2抑制剂组有3只死亡,大鼠形体消瘦、生长缓慢,饮食较少。黄芪甲苷低、高剂量组大鼠给药期间无死亡,且体重减轻及饮食减少现象有所改善。Nrf2抑制剂组有5只死亡,且体质量减轻、饮食减少现象进一步加重。
2.2 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠血清Scr、BUN、β2-MG水平的影响
与假手术组相比,模型大鼠血清Scr、BUN、β2-MG水平升高(P<0.05)。与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠血清Scr、BUN、β2-MG水平回降(P<0.05),且高剂量组优于低剂量组;Nrf2抑制剂组大鼠血清Scr、BUN、β2-MG水平升高(P<0.05)(表1)。
2.3 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠肾组织病理损伤的影响
假手术组大鼠肾小管毛细血管周结构正常;与假手术组相比,模型组大鼠肾小管周毛细血管管腔红细胞聚集、内皮细胞肿胀及增大、管腔狭窄及受压明显;与模型组相比,Nrf2抑制剂组肾小管周毛细血管管腔红细胞聚集、内皮细胞肿胀及增大进一步增加;黄芪甲苷低、高剂量组大鼠上述病理损伤减轻明显,且随黄芪甲苷剂量增加上述病理损伤改善越显著;黄芪甲苷+Nrf2抑制剂组上述病理损伤与模型组相近(图1)。
2.4 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠肾组织ROS水平的影响
与假手术组相比,模型组大鼠肾组织ROS水平升高(P<0.05)。与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠肾组织ROS水平回降(P<0.05),且随剂量升高其回降越明显;Nrf2抑制剂组大鼠肾组织ROS水平升高(P<0.05)(图2,表2)。
2.5 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠血清TNF-α、IL-6水平的影响
与假手术组相比,模型组大鼠血清TNF-α、IL-6水平升高(P<0.05)。与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠血清TNF-α、IL-6水平回降(P<0.05),且随剂量升高其回降越明显;Nrf2抑制剂组大鼠血清TNF-α、IL-6升高(P<0.05)(表3)。
2.6 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠肾组织Nrf2及CD31阳性共表达的影响
与假手术组相比,模型组大鼠肾组织Nrf2+CD31+水平升高(P<0.05)。与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠肾组织Nrf2+CD31+水平进一步升高(P<0.05),且随剂量升高其升高越明显;Nrf2抑制剂组大鼠血清Nrf2+CD31+水平回降(P<0.05)(图3,表4)。
2.7 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠肾组织HO-1及VEGF阳性表达的影响
假手术组大鼠肾小管上皮细胞区域、肾小球内皮细胞区域及肾小球系膜细胞区域HO-1及eNOS染色较弱。与假手术组相比,模型组大鼠肾组织上述区域eNOS及HO-1阳性表达升高(P<0.05);与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠肾组织eNOS阳性表达降低(P<0.05),HO-1阳性表达升高(P<0.05),且黄芪甲苷剂量越高上述指标变化越明显;Nrf2抑制剂组eNOS阳性表达升高(P<0.05),HO-1阳性表达降低(P<0.05)(图4,表5)。
2.8 黄芪甲苷Ⅳ对大鼠肾组织ANGPTL6、MCP-1蛋白表达的影响
与假手术组相比,模型组大鼠肾组织ANGPTL6、MCP-1表达升高(P<0.05)。与模型组相比,黄芪甲苷低、高剂量组大鼠肾组织ANGPTL6、MCP-1表达回降(P<0.05),且黄芪甲苷剂量越高上述指标变化越明显;Nrf2抑制剂组大鼠肾组织ANGPTL6、MCP-1表达升高(P<0.05)(图5,表6)。
3、讨论
肾血管微循环结构或功能损坏可引起肾小球、肾小管及肾间质损害[8]。低氧条件及炎性刺激下,肾小管周毛细血管更易受到损害[9]。尿毒症患者血液中Scr、BUN、β2-MG等毒素大量积聚,是导致血管内皮功能失调的主要原因[10]。另外,尿毒症患者体内炎性因子IL-6、TNF-α升高,可促进红细胞在毛细血管管腔积聚、引起血管内皮功能损伤、导致肾毛细血管血流中断,而加重肾损伤[11]。本研究发现,模型组大鼠血清Scr、BUN、β2-MG等毒素及炎性因子IL-6、TNF-α升高的同时,肾小管周毛细血管管腔红细胞聚集、内皮细胞肿胀及增大等肾血管病变加重,预示模型造模成功。
炎性因子TNF-α、IL-6还可激活细胞外信号调节激酶(ERK)通路激活来调控炎症及氧化应激反应,并促进血管内皮及组织损伤。炎性因子及氧化应激均可促进肾组织及内皮细胞释放ANGPTL6,并通过激活ERK-eNOS信号通路,来促进内皮细胞释放NO,诱导肾小球及肾小管血管内皮细胞释放MCP-1来诱导炎性细胞聚集,从而加重肾脏血管病变[12]。本研究发现模型组大鼠肾组织中ANGPTL6、MCP-1表达升高的同时,eNOS表达也明显升高,提示ANGPTL6/eNOS/MCP-1可能与肾血管内皮损伤关系密切。
Nrf2//HO-1通路是抵御外界炎性反应及氧化应激的防御性传导通路,且与肾损伤关系密切。研究证实,ERK磷酸化,可促进Nrf2释放并激活抗氧化酶如HO-1表达,来抑制ROS水平升高,发挥抗氧化反应[13,14]。本研究发现,模型组大鼠Nrf2/HO-1在血管内皮细胞中表达升高,而用Nrf2/HO-1通路抑制剂阻断Nrf2/HO-1表达后,大鼠死亡、肾组织炎性损伤、肾血管病变进一步加重,提示抑制Nrf2/HO-1通路活化,可加重肾血管内皮损伤。黄芪甲苷Ⅳ对肾脏具有保护作用,能抑制体外培养的人血管内皮细胞凋亡[15]。本研究发现随着黄芪甲苷Ⅳ剂量的升高,大鼠肾组织Nrf2/HO-1激活;大鼠肾组织炎性及氧化应激损伤、肾血管内皮损伤缓解越明显,提示黄芪甲苷Ⅳ发挥抗尿毒症肾损伤作用,可能与激活Nrf2/HO-1通路有关。Nrf2抑制剂可逆转黄芪甲苷Ⅳ上述作用。
综上所述,黄芪甲苷Ⅳ可能通过促进Nrf2/HO-1通路介导的抗炎、抗氧化途径激活,减轻尿毒症大鼠肾血管内皮损伤。为阐明黄芪甲苷保护尿毒症肾损伤的机制提供了新的可能机制,但尿毒症肾血管内皮损伤的机制复杂,还涉及自噬过程,黄芪甲苷Ⅳ保护尿毒症肾血管损伤的其他可能机制还有待进一步深入研究。
参考文献:
[2]黄梦杰,魏日胞.尿毒症毒素与血管内皮功能损伤研究新进展[J].中国中西医结合肾病杂志,2018,19:167-169.
[4]陈素枝,檀金川.黄芪甲苷保护肾脏的分子机制研究进展[J].中草药,2018,49:5973-5979.
[5]位冒冒,申虎,袁祖贻,等.阿利克仑对尿毒症大鼠的保护作用[J].中国老年学杂志,2011,31:3103-3106.
[6]何自育,杨育红.黄芪甲苷对两肾─夹型肾性高血压大鼠肾脏病变的影响[J].大连医科大学学报,2014,7:27-30.
[10]齐玲,孔祥栋,盛丹虹,等.不同透析方式对尿毒症患者血管内皮细胞功能、微炎症状态及心血管并发症的影响[J].浙江医学,2018,40.62-64.
[15]崔伟,王高频,卢美丽,等.黄芪甲苷通过激活PI3KI/AKT通路抑制内皮细胞内质网应激介导的细胞凋亡的研究[J].中药药理与临床,2018,34.39-4
文章来源:朱文胜,郑忠毓,李晓霞,邓建南,张吉春.黄芪甲苷Ⅳ减轻尿毒症模型大鼠肾血管内皮损伤[J].基础医学与临床,2021,41(11):1629-1636.
分享:
尿毒症典型症状有胃肠道症状、血液系统表现、心血管系统表现等。尿毒症是一种不可逆的疾病,目前主要通过适当治疗、管理改善尿毒症患者的生存情况进行维持。维持性血液透析(maintenancehemodialysis,MHD)是延长尿毒症患者生命的过渡方法。
2025-09-06研究发现,血管内皮细胞功能异常是尿毒症患者发生心脑血管疾病的重要因素。近年来,由心脑血管疾病所造成的死亡率高达50%以上。相关报道发现,尿毒症患者较健康人更易患心血管疾病,同时心血管不良事件的发生率同样较高。在临床上,血管钙化导致心血管疾病的风险被逐渐发现,并认为其是导致患者死亡的重要因素。
2025-08-26肾衰竭是常见的严重疾病,晚期可演变成尿毒症,严重影响患者生活质量。维持性血液透析能清除体内毒素和多余水分,改善临床症状。但长期血液透析可能导致内环境紊乱,引发贫血等症状,影响患者生活质量和生命安全。医学界普遍认为血液透析患者出现的贫血症状,与其体内营养物质的缺乏有密切关联。
2025-07-29血液透析在目前临床对尿毒症患者治疗中相对使用较多。总的来看,针对血液透析后仍旧无法实现血压降低的患者,临床上将其称之为尿毒症难治性高血压。从患者的角度来看,由于受到血压问题的影响,其往往可出现头晕、头痛以及颈项板紧等症状,严重者可导致患者出现肾脏与心脏等重要脏器功能衰竭问题,进而危及患者生命[2]。
2025-06-27尿毒症血液透析患者通常存在负性情绪,影响其病症恢复进程[1]。常规护理因无法对患者开展针对性护理措施,且患者自我管理能力较差,肾功能恢复缓慢[2]。5E康复护理从鼓励(encouragement)、教育(education)、运动(exercise)、工作(employment)、评估(evaluation)等五个方面实施综合性康复护理,可降低患者的消极情绪,从而实现康复目标[3]。
2025-06-19尿毒症患者肾功能受损,需开展血液透析、血液滤过等肾脏替代治疗,以延长生存期[1-2]。血液透析患者负性情绪严重,导致治疗依从性较差,影响预后及生命质量。多学科协作护理强调不同领域的专业人员共同参与,有利于为患者提供科学、全面、高质量的护理措施[3-4]。本文观察多学科协作护理在尿毒症血液透析患者中的应用效果。
2025-05-272型糖尿病2型糖尿病(type2diabetesmellitus,T2DM)属于一种慢性代谢紊乱状况,长期的高血糖状态对肾脏的肾小球过滤系统造成损害,可能发展成糖尿病肾病,最终演变为重症尿毒症。该病症表现为肾功能急剧恶化,伴随代谢失调、多器官功能衰退和免疫系统功能降低,导致患者易受感染侵袭,使得治疗与护理面临极大挑战。
2025-04-27尿毒症是终末期肾病(ESRD)的严重表现形式,其主要特征是由于肾脏功能丧失,导致体内代谢废物和毒素的累积,这对机体的多系统功能造成显著影响[1-2]。随着肾功能的不可逆下降,尿毒症患者面临的症状包括疲乏无力、胸闷、水肿和神经系统异常等,显著降低了生活质量和生存率。
2025-04-27尿毒症心肌损伤是因肾脏功能衰竭后引起心脏损伤的一类疾病,最终可致心肾功能衰竭,已成为危害全球的慢性疾病[1]。目前的治疗手段还不能完全有效控制尿毒症心肌损伤对透析患者生命的威胁,究其原因,还是在于对尿毒症心肌损伤的具体发生机制不完全明了。
2025-03-28尿毒症是各种肾脏病终末期毒性物质蓄积所导致的以水电解质紊乱和酸碱平衡失调为主要表现的疾病,多数患者需长期依赖肾脏替代疗法以延续生命,维持性血液透析(MHD)是当前临床治疗尿毒症患者的常见肾脏替代疗法。相关研究发现,尽管尿毒症 MHD患者生存期不断延长,但仍有部分患者因疾病自身和血透治疗导致微生态系统改变和肠道内环境失调。
2025-03-26人气:19289
人气:18217
人气:17588
人气:16628
人气:15803
我要评论
期刊名称:中华重症医学电子杂志
期刊人气:3085
主管单位:中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会
主办单位:中华医学会
出版地方:北京
专业分类:医学
国际刊号:2096-1537
国内刊号:11-6033/R
创刊时间:2015年
发行周期:季刊
期刊开本:16开
见刊时间:7-9个月
影响因子:0.913
影响因子:0.000
影响因子:0.384
影响因子:0.173
影响因子:2.400
您的论文已提交,我们会尽快联系您,请耐心等待!
你的密码已发送到您的邮箱,请查看!