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补阳还五汤增强GPX4表达抑制铁死亡减轻脑缺血再灌注损伤

  2024-02-21    111  上传者:管理员

摘要:目的 探讨补阳还五汤减轻脑缺血再灌注损伤是否通过增强GPX4的表达抑制铁死亡的机制。方法 选取健康雄性SD大鼠48只,随机分为4组:假手术组(Sham组)、模型组(MCAO/R组)、补阳还五汤组(BYHWD组)、阳性对照药组(DFO组)。所有实验动物均建MCAO/R模型(假手术组仅剥离)。BYHWD组给予补阳还五汤灌胃处理,DFO组给予DFO腹腔注射处理,其余组予以生理盐水灌胃处理。再灌注72 h进行指标评定及取材。神经功能评分检测神经功能;TTC染色测定脑梗死面积;尼氏染色观察脑组织形态结构;生化试剂检测血清GSH、丙二醛(MDA)、脑组织铁含量;免疫荧光和Western blot检测谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)的蛋白表达。结果 与假手术组相比,模型组大鼠神经功能损伤明显,脑梗死体积增多,脑组织病理学损伤明显,尼氏体数量减少,脑组织铁含量、血清MDA含量明显增加,血清GSH含量、脑组织GPX4的蛋白表达显著降低(P<0.05);与模型组相比,补阳还五汤组大鼠神经功能明显好转,脑梗死体积降低,脑组织病理学损伤减轻,脑组织铁含量、血清MDA含量降低,血清GSH含量,脑组织GPX4的蛋白表达显著增加(P<0.05)。结论 补阳还五汤抑制脑缺血再灌注损伤可能通过增强GPX4的表达抑制铁死亡而发挥作用。

  • 关键词:
  • 缺血性脑卒中
  • 脑缺血再灌注损伤
  • 补阳还五汤
  • 谷胱甘肽过氧化物酶4
  • 铁死亡
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补阳还五汤是治疗缺血性脑卒中的经典名方效方[1]。脑缺血再灌注损伤(cerebral ischemia-reperfusion injury,CIRI)是缺血性脑卒中发生后通过药物溶栓或手术取栓重新恢复血流灌注对脑组织造成的进一步损伤,其病理机制十分复杂,可能导致各种病理变化和细胞死亡[2,3]。铁死亡是一种铁依赖性的谷胱甘肽过氧化物酶4(glutathione peroxidase 4,GPX4)失活的细胞死亡形式[4]。GPX4是铁死亡过程中的关键调节因子,研究表明,细胞GPX4的缺乏或抑制会导致脂质过氧化诱发铁死亡,而增加GPX4水平或活性可以抑制铁死亡[5]。GPX4成为了探索铁死亡在各类疾病中的治疗靶点[6]。本研究主要探讨补阳还五汤减轻CIRI是否通过增强GPX4的表达抑制铁死亡,以期进一步阐明补阳还五汤治疗CIRI的作用机制,为临床治疗缺血性脑卒中提供依据。


1、材料与方法


1.1实验动物

S P F级健康雄性S D大鼠48只,7~8周龄,体质量250~280 g,购自北京维通利华实验动物技术有限公司,合格证号为SCXK(京)2016-0011,适应性饲养一周后开始实验。所有实验动物均依据伦理审查委员会关于《实验动物管理条例》的指导方针给予人道主义关怀。

1.2实验药物

补阳还五汤药物组成:黄芪120 g、当归6 g、地龙3 g、桃仁3 g、赤芍5 g、红花3 g、川芎3 g,购自北京同仁堂药店。将药物经水浸泡软化30 min后,予以武火煮沸后文火煮,最后水煎液浓缩至100 mL,得到每1 mL补阳还五汤水煎液对应的生药量为1.43 g。甲磺酸去铁胺(deferoxamine,DFO)购自Med Chem Express公司,产品批号116349。

1.3主要试剂

TTC染液、尼氏染液、兔抗β-actin抗体、FITC-羊抗鼠IgG荧光标记抗体(武汉塞维尔生物科技有限公司);鼠抗GPX4抗体、辣根过氧化物酶标记山羊抗小鼠IgG(武汉三鹰生物技术公司);辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG(上海碧云天生物技术有限公司);还原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)测定试剂盒、丙二醛(malonaldehyde,MDA)测定试剂盒、组织铁测定试剂盒(南京建成生物技术公司)。

1.4主要仪器

MCAO栓线(北京西浓科技有限公司);PVDF膜(Millipore);组织包埋机、轮转切片机及显微拍照系统(Leica);电泳系统及半干转膜仪系统(Bio-Rad);近红外双色激光成像系统(LI-COR);高速低温组织研磨仪(武汉塞维尔生物科技有限公司);冷冻高速离心机、多功能酶标仪(Thermo)。

1.5实验动物分组、造模及给药

将48只健康雄性SD大鼠随机分为4组:假手术组(Sham组)、模型组(MCAO/R组)、补阳还五汤组(BYHWD组)、阳性对照药组(DFO组),每组12只大鼠。除Sham组外,其余各组大鼠均参照文献[7]建立MCAO模型,缺血2 h后再灌注72 h。造模结束后BYHWD组给予补阳还五汤水煎液灌胃处理,剂量参照实验室前期研究为14.3 g/kg/d。DFO组给予腹腔注射甲磺酸去铁胺5 mg/kg,剂量参照相关文献[8]。假手术组和模型组均予以等剂量生理盐水灌胃处理。各组均为每24 h给药1次。

1.6 Zea Longa评分评估神经功能缺损情况

大鼠清醒后根据Zea Longa评分[9],将评分为1~3分的大鼠入组,0分、4分予以剔除;评分标准:无神经功能缺损情况为0分;悬尾时对侧前爪屈曲,不能完全伸展,为1分;行走时不能走直线且出现“追尾”现象,即向对侧转圈,为2分;行走时向对侧倾倒为3分;无自主活动或意识丧失为4分。

1.7 TTC染色检测脑梗死体积百分比

再灌注72 h后将大鼠麻醉并取出完整脑组织,经PBS清洗后置于模具中,-20℃冰冻30 min沿冠状面其切成6个2 mm厚的脑片,避光置于TTC染液中,放入37℃恒温箱中避光染色30 min,每15 min翻一次面使染色均匀。再用4%多聚甲醛固定液固定24 h,将其按顺序放置,相机拍摄后用Image J软件计算缺血侧脑梗死体积占总体积百分比。

1.8尼氏染色观察神经元损伤情况

再灌注72 h后将大鼠麻醉并取出完整脑组织,用4%多聚甲醛固定液充分固定24 h以上,梯度乙醇脱水、透明、浸蜡、石蜡包埋,制备厚度约5µm的石蜡切片。将石蜡切片常规脱蜡至水,进行尼氏染液染色,经梯度乙醇脱水、二甲苯透明后,中性树胶封片,于显微镜下观察并拍照。

1.9大鼠GSH、MDA、组织铁测定试剂盒含量检测

将取得的血清以及组织样本按标本处理的要求步骤进行离心、提取上清等操作,按说明书置于96孔板上样后,分别在420 nm、532 nm及520 nm波长下用酶标仪测定检测样品的吸光度,根据公式计算GSH、MDA、铁离子含量。

1.1 0 Western blot检测GPX4的蛋白表达水平

将冻存脑组织称量后冰上裂解,经匀浆、离心后B C A法测定,计算蛋白浓度。剩余上清液中加适量loading buffer变性,经SDS-PAGE电泳分离,半干转法转移到PVDF膜上;5%脱脂奶粉溶液室温封闭2 h,TBST洗膜后在Ⅰ抗[GPX4抗体(1:2000)及内参照β-actin抗体(1:1000)]溶液中4℃孵育过夜,TBST洗膜,与相应种属的Ⅱ抗(辣根过氧化物酶标记的IgG抗体)溶液室温孵育2 h,TBST洗膜。ECL显色剂避光孵育后曝光成像,使用凝胶成像系统采集图像,用Image J软件分析计算蛋白GPX4相对表达量。

1.11统计学处理

采用SPSS 26.0、Image J和Graph Pad Prism 8.0.1软件对所得实验数据进行分析。数据均采用均数±标准差的形式表示。服从正态分布及方差齐时采用单因素方差分析,不服从分布或者方差不齐时采用非参数检验。以P<0.05为差异有统计学意义。


2、结果


2.1补阳还五汤对脑缺血再灌注损伤大鼠神经功能的影响

Sham组大鼠神经功能正常,其余各组大鼠均出现不同程度神经功能缺损情况。与Sham组相比,MCAO/R组大鼠神经功能缺损明显,神经功能学评分增高,差异有显著性意义(P<0.01);与MCAO/R组相比,BYHWD组和DFO组大鼠神经功能缺损情况有所好转,神经功能学评分降低,差异有显著性意义(P<0.05),见图1。

图1 Zea Longa评分观察各组大鼠神经功能缺损状况  

2.2补阳还五汤对脑缺血再灌注损伤大鼠脑组织脑梗死体积的影响

如图2所示,Sham组大鼠脑片均为红色,未见白色梗死区域;与Sham组比较,MCAO/R组大鼠脑片出现大片明显的白色梗死区域,脑梗死体积明显增多(P<0.01);与MCAO/R组比较,BYHWD组和DFO组大鼠脑片白色梗死区域较少,脑梗死体积明显减少(P<0.05)。

图2大鼠脑梗死体积  

2.3补阳还五汤对脑缺血再灌注损伤大鼠脑组织尼氏染色的影响

尼氏染色结果显示,Sham组大鼠脑皮质神经细胞的形态结构均正常,可见数量较多的尼氏体,未见明显病理改变。与Sham组相比,MCAO/R组大鼠脑皮质半暗带区神经细胞尼氏体明显减少,多见空泡样改变与胞核固缩等病理改变;与MCAO/R组相比,BYHWD组和DFO组大鼠脑皮质半暗带区神经细胞尼氏体增多,细胞损伤程度减轻。见图3。

图3大鼠脑组织尼氏染色  

2.4补阳还五汤对脑缺血再灌注损伤大鼠脑组织铁含量和血清GSH、MDA含量的影响

与Sham组相比,MCAO/R组大鼠组织铁含量以及血清MDA水平明显升高,GSH水平明显降低(P<0.01);与MCAO/R组相比,BYHWD组和DFO组大鼠组织铁含量以及血清MDA水平明显降低,GSH水平明显升高(P<0.01)。见图4。

图4大鼠血清中GSH含量、MDA含量以及脑组织铁含量 

2.5补阳还五汤对脑缺血再灌注损伤大鼠蛋白GPX4表达的影响

Western blotting结果如图5所示,与假手术组比较,模型组大鼠脑组织GPX4蛋白表达显著下降(P<0.01);与模型组比较,各给药组大鼠脑组织GPX4蛋白表达显著上调(P<0.05)。

图5大鼠蛋白GPX4表达  


3、讨论


缺血性脑卒中是一类常见的神经系统疾病,致死率居于全球第二,且多数患者预后不良,是致残的主要原因[10]。目前临床上对缺血性脑卒中的治疗方式是在一定的治疗时间窗内通过药物溶栓或手术取栓,但即便恢复再通后仍有半数左右患者因脑组织缺血再灌注损伤致死致残,行之有效的良药研发仍展现出巨大的未竞需求[11]。中药复方具有多靶点多途径协同作用的效果[12]。补阳还五汤出自清代名医王清任《医林改错》,是传统的中药复方,其通过抑制兴奋性氨基酸毒性、减轻钙超载、抑制氧自由基损伤等途径大幅改善患者预后[13]。而补阳还五汤与CIRI在铁死亡之间的联系与作用机制仍需要更多的研究来进一步了解。

GPX4是一种抗氧化酶,参与细胞中脂质过氧化物转化为无毒脂质的过程,是铁死亡过程中的关键调节因子[5]。GPX4通过介导铁死亡参与脑缺血再灌注损伤过程,而增强GPX4表达可改善脑缺血再灌注损伤造成的脑组织损伤[14]。GPX4通过清除细胞内的脂质过氧化物来保护细胞,减少氧化应激有害产物MDA的生成,降低铁离子的氧化作用,而GSH是合成GPX4的必要底物,可以辅助GPX4发挥抗氧化功能清除有害的脂质过氧化物的作用[14,15]。GPX4与铁死亡以及CIRI之间的联系对于开发新的、有效的治疗方法具有巨大的潜力[16]。

本实验结果显示,补阳还五汤能显著降低脑缺血再灌注损伤后大鼠的神经功能缺损评分、脑梗死体积、脑组织病理损伤明显减轻,且显著增加CIRI后大鼠GSH、GPX4表达水平、降低MDA水平及组织铁含量。综上所述,补阳还五汤可能通过增强半暗带区GPX4的表达抑制铁死亡减轻脑缺血再灌注损伤。


参考文献:

[1]刘婉沂,张英丰,周欣,等.补阳还五汤抗脑缺血的作用机制研究进展[J].中药新药与临床药理,2022,3(33):411-418.

[2]刘磊,刘丽华,马玉奎.脑缺血再灌注损伤机制研究进展[J].药学研究,2016,3(59):542-544.

[3]张行行,赵麓,王斌.脑缺血再灌注损伤机制及中药防治研究文献分析[J].现代中医药,2022,4(22):6-16.

[7]何天鹏,王冬,王东亮,等.浅谈小鼠MCAO模型制作的心得体会[J].中华脑科疾病与康复杂志(电子版),2019,(94):243-245.

[9]周弟弥,甘露,陈琳,等.醉茄素A对缺血性脑卒中大鼠的神经保护作用及其机制[J].吉林大学学报(医学版),2021,47(4):919-925.

[10]洪幸,李蕊,魏鲁刚,等.中西医康复治疗对脑卒中后骨骼肌损伤的修复作用及机制研究进展[J].中华全科医学,2022,2(06):1022-1026.

[11]耿介立,俞羚,孙亚蒙,等.急性缺血性卒中患者早期处理指南:美国心脏协会/美国卒中协会的健康职业者指南[J].神经病学与神经康复学杂志,2013,1(01):33-80.

[12]傅春燕,刘永辉,曾立,等.中药(复方)药代动力学研究进展[J].邵阳学院学报(自然科学版),2021,1(85):101-108.

[13]单玉栋,高维娟.补阳还五汤防治脑缺血再灌注损伤的研究进展[J].中医药学报,2021,49(8):115-120.


基金资助:中央引导地方科技发展资金项目(206Z7706G);河北省科技研发平台与新型研发机构建设专项(20567626H);


文章来源:蔡国英,刘均广,叶佳蓓等.补阳还五汤增强GPX4表达抑制铁死亡减轻脑缺血再灌注损伤[J].承德医学院学报,2024,41(01):10-14.

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