首页 > 论文范文 > 医药卫生论文 > 内科论文 > 心血管内科论文 > 连接蛋白2和FGF23在房颤介导心肌病兔心房组织中的表达

连接蛋白2和FGF23在房颤介导心肌病兔心房组织中的表达

2024-01-29 30 上传者：管理员

摘要：目的探究连接蛋白2(JP2)和成纤维细胞生长因子23(FGF23)在房颤介导心肌病(AMC)兔中的表达规律。方法通过左心房快速起搏法建立心房颤动(AF)模型，4周后行超声心动图检查，射血分数下降>10%纳入AMC组，否则为AF组，对照组只植入起搏器不起搏。最终成功建立AF动物模型11只，其中AF组6只，AMC组5只，对照组6只。超声心动图检测左室舒张末期内径(LVEDD)、左室收缩末期内径(LVESD)、左室射血分数(LVEF)等指标，酶联免疫吸附法(ELISA)检测血清JP2和FGF23水平。处死动物后，取心房组织，Western blot和RT-qPCR检测JP2和FGF23蛋白及mRNA表达。结果与对照组相比，AMC组左房内径、右房内径、右室内径增大，LVEF降低，与AF组相比，AMC组LVEF降低，主动脉增宽，右室扩大。与对照组相比，AF组左房心肌细胞FGF23(P<0.001)、JP2(P<0.01)的表达均明显增加，而AMC组JP2表达降低(P<0.001)。与AF组相比，AMC组FGF23和JP2的表达下降。与对照组相比，AF组FGF23和JP2血浆浓度升高，AMC组FGF23水平升高。与AF组相比，AMC组FGF23和JP2血浆浓度偏低。结论在AMC兔模型中，FGF23表达增加，JP2表达下降。

关键词：
AMC
心房颤动
成纤维细胞生长因子23
房颤介导心肌病
舒张功能受损
连接蛋白2
加入收藏

房颤介导心肌病(atrial fibrillation mediated cardiomyopathy, AMC)指由于阵发或持续性心房颤动(atrial fibrillation, AF)引起的心房或心室的扩张、收缩与舒张功能受损，最终发展为心力衰竭(heart failure, HF),当恢复窦性心律或心室率得到严格控制时，心脏扩大与心衰能够迅速、甚至完全逆转[1]。临床中AMC的发病率并不低，早期诊断干预可以明显改善患者预后。AMC病理过程中发生不同程度的的电重构和结构重构[2]。

连接蛋白2(junctophilin2,JP2)是介导细胞膜上的L型钙通道(L-type calcium channel, LTCC)与内质网(sarcoplasmic reticulum, SR)上的兰尼碱受体(ryanodine receptor2,RyR2)的相互作用的一种连接蛋白，使LTCC与SR保持稳定的距离，促进兴奋-收缩耦联的发生[3]。JP2在不同病因的心肌病(如扩张性心肌病，缺血性心肌病)中均表达下降[4,5],但目前还没有研究其在心律失常性心肌病中的表达情况。成纤维生长因子23(fibroblast growth factor 23,FGF23)则在AF和HF的纤维化过程中发挥着重要作用，FGF23通过增加活性氧并随后激活STAT3和SMAD3信号转导，诱导房颤患者的心房纤维化[6]。

因此通过构建AMC实验模型，探讨电重构蛋白—JP2与结构重构蛋白—FGF23表达水平的变化，探究AMC的机制，可为临床AMC的早期诊断与治疗提供方向。

1、材料与方法

1.1 材料

1.1.1 动物：

普通级雄性新西兰大白兔(河北省望都县彤辉养殖有限公司),体质量2.5～3 kg, 许可证号[SCXK(冀)2016-002]。实验动物均于河北省人民医院临床医学研究中心动物室单笼饲养，室温(17±3)℃,摄水摄食不限。本研究经过河北省人民医院动物伦理委员会审查(2023科研伦审第40号)。

1.1.2 主要试剂：

水合氯醛和青霉素钠(华北制药有限公司),山羊抗兔二抗、山羊抗鼠二抗、FGF23 抗体和JP2抗体(Bioss)、兔FGF23试剂盒和兔连接蛋白2 ELISA试剂盒(江苏晶美生物技术有限公司)、总RNA提取试剂盒(天根生化科技有限公司，DP439)。

1.2 方法

1.2.1 兔的分组及处理：

将兔分为对照组(control)和房颤介导心肌病模型组，4周后射血分数下降≤10%者纳入AF组，射血分数下降>10%者纳入AMC组。通过左心房电极快速起搏法构建房颤介导心肌病动物模型，起搏器起搏模式为AOO,起搏频率600 beats/min, 刺激时程(0.25±0.01)ms, 输出电压≥5 V,每日描记标准肢体导联心电图以确保起搏器正常工作，当记录到房颤心电图，持续时间≥1 min, 即认为房颤建模成功。对照组只植入起搏器但不起搏。

1.2.2 超声心动图检查：

分别于手术前后对各组动物行超声心动图检查，测定左心房内径(left atrial diameter, LAD),左室射血分数(left ventricular ejection fraction, LVEF),左室舒张末期内径(left ventricular end diastolic diameter, LVEDD)、左室收缩末期内径(left ventricular end systolic diameter, LVESD)、主动脉、室间隔、左室后壁、右心房内径(right atrial diameter, RAD)、右心室内径(right ventricular diameter, RVD)等超声指标。以上各测量值均取连续3次测量的平均值(图1)。

图1 AMC模型建立前后超声心动图

1.2.3 RT-qPCR检测各组目的基因的mRNA转录：

用石蜡包埋组织切片总RNA提取试剂进行样本RNA提取，反转录合成cDNA,以cDNA为模板进行PCR扩增，扩增条件：95 ℃ 30 s 预变性，95 ℃ 5 s变性，60 ℃ 40 s退火延伸，40个循环，目的基因引物序列：FGF23上游引物5′-CAGAGCCTATCCCA ATGCCTC-3′,FGF23下游引物5′-GGCACTGTAGAT GGTCTGATGG-3′,JP2上游引物5′-ACTCTGGCTC CTGGAACTTTG-3′,JP2下游引物5′-GCGCCCCTTG GTCTCTATG-3′。实验重复3次，根据Ct值，按照2-△△Ct相对定量计算公式计算出各样品的目的基因相对定量结果。

1.2.4 Western Blot检测心肌组织蛋白表达：

使用RIPA细胞裂解液提取蛋白，采用BCA法测定蛋白浓度，根据上样量进行浓度调平，100 ℃煮沸10 min进行蛋白变性，将蛋白上样并进行SDS-PAGE凝胶电泳，转移至PVDF膜上进行转膜，TBST洗涤1次5 min, 5%脱脂奶粉室温封闭2 h, 在脱色摇床上孵育一抗，一抗孵育条件：FGF23抗体(1∶1 000,4 ℃过夜),JP2抗体(1∶1 000,4 ℃过夜),ACTB抗体(1∶5 000,4 ℃过夜)。TBST洗膜3次，各10 min, 室温孵育二抗1 h, TBST洗膜3 次，各45 min, ECL法显影成像，用凝胶图象处理系统分析目标条带的吸光度值。

1.2.5 ELISA检测血清JP2、FGF23水平：

从各组兔耳缘静脉取血3～4 mL,离心后取血清冻存于-80 ℃冰箱中保存，根据兔FGF23 ELISA试剂盒和兔JP2 ELISA试剂盒的操作步骤检测血清JP2、FGF23水平。

1.3 统计学分析

使用SPSS 26.0统计软件进行数据处理。服从正态分布的采用±均数±标准差表示，多组间比较采用方差分析，组间两两比较采用LSD-t检验。不服从正态分布的采用中位数(4分位数间距)描述，多组间比较采用非参数秩和检验。计数资料以百分比表示，其组间比较采用卡方检验或Fisher精确概率法。

2、结果

2.1 超声心动图比较

与对照组相比，AMC 组LAD、RAD、RVD增加，LVEF降低，与AF组相比，AMC组LVEF降低，主动脉和RVD增加(表1)。

表1 各组超声心动图指标

2.2 各组JP2、FGF23基因转录变化

与对照组相比，AF组FGF23和JP2目的基因的mRNA转录增加(P<0.001),AMC组JP2 mRNA转录降低(P<0.001)。与AF组相比，AMC组FGF23和JP2目的基因的mRNA转录降低(图2)。

图2 心肌组织的基因转录水平

2.3 各组JP2、FGF23蛋白表达变化

与对照组相比，AF组FGF23(P<0.001)和JP2(P<0.01)的表达明显增加，AMC组JP2表达明显降低(P<0.001)。与AF组相比，AMC组FGF23和JP2表达下降(图3,4)。

图3 Western blot检测表达心肌组织蛋白

2.4 各组血浆JP2、FGF23水平变化

与对照组相比，AF组FGF23和JP2血浆浓度升高，AMC组FGF23水平升高。与AF组相比，AMC组FGF23和JP2血浆浓度偏低(表2)。

3、讨论

房颤介导心肌病(AMC)是一种继发于房颤的在当今的临床实践中其发病率可能被低估，了解AMC的发病机制十分重要。

JP2是一个由696个氨基酸组成的蛋白质，其N末端作用于心肌细胞质膜， C端嵌入内质网膜，使两者之间保持一定的距离，JP2对维持心肌正常的兴奋-收缩功能起着至关重要的作用[7]。JP2不仅可以维持LTCC与RyR2受体的紧密连接，还使处于关闭状态的RyR2受体更加稳定。JP2基因敲除小心肌病，最初为特发性AF患者，因AF长期控制不佳而继发性引起心房、心室的扩大，最终发展为房颤介导心肌病，诊断时需具备两个条件：1)排除患者有引起心室扩大、心衰的其他病因；2)窦律恢复并维持时(包括心室率得到严格控制),心脏扩大与心衰得到完全性或几乎完全性逆转[1]。因此对于AMC的诊断是“回顾性”的，鼠表现为明显的膜连接复合体(junction membrane complex, JMC)紊乱，更易发生HF[8,9]。本文研究了JP2在AMC中的表达变化，发现JP2在AMC中的表达下降。然而，在房颤组中，JP2表达增加。有研究表示JP2表达下降会导致内质网钙泄漏，心肌细胞中自发Ca2+火花频率增加[10]。但起搏刺激JP2过度表达的心肌细胞，结果显示钙电流峰值和钙泄漏频率更高[11]。因此，JP2的高表达和低表达都会破坏细胞内的钙平衡进而导致心律失常。在代偿期的心肌病动物模型中，心肌细胞T小管的体积和表面积都会增加。相反，在心肌肥厚或心力衰竭模型中，其体积和表面积则会减少[12]。由于JP2与T小管共同定位，推测JP2在快速起搏下代偿性增加，最终进入失代偿期，此时JP2 表达减少，心肌收缩力下降，HF发生。此外，在一个JP2过度表达模型中发现，RyR2簇的大小增加，但兴奋性趋于稳定[13]。因此，JP2与RyR2的比例可能比JP2本身的表达对疾病的发展更有价值。

图4 心肌组织中JP2和FGF23的蛋白表达水平

表2 血浆JP2、FGF23浓度

FGF23在AF的纤维化过程中发挥着重要作用[14],本文同样发现AF组FGF23表达明显增加，当发生射血分数下降时，FGF23的表达相对减少。有研究表示FGF23与左室功能独立相关[15]。另外FGF23可能受心律失常的影响而有不同的作用机制，成纤维细胞生长因子可以直接作用于心肌Na+通道、Ca2+通道[16],房颤时心肌细胞发生钙重构，离子通道改变，进而影响FGF23发挥作用，期待未来大规模的基础及临床研究进行探索。

本研究的一个局限是没有评估JP2与RyR2的比值，这使无法对膜连接复合体做出全面的说明。动物试验样本量较小，可能导致统计分析不充分或有偏差。此外，由于时间限制，动物试验产生的短期效应可能不同于长期效应，因此在解释结果是否适用于临床时必须谨慎。

综上所述，在AMC动物模型中，FGF23表达增加，JP2表达下降。这些发现可能为开发针对JP2的抗房颤药物开辟新的途径，同时为AMC的发病机制与诊断研究提供方向。

参考文献:

[1]郭继鸿.心房颤动性心肌病[J].临床心血管病杂志,2016,32:319-324.

[9]刘峰宇,韩薇.心肌细胞钙稳态失调在心力衰竭中作用的研究进展[J].基础医学与临床,2022,42:502-506.

基金资助:河北省自然科学基金(C2015307019);

文章来源:郭爽,李树仁,赵美等.连接蛋白2和FGF23在房颤介导心肌病兔心房组织中的表达[J].基础医学与临床,2024,44(02):199-203.